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総説
ゲノム編集総説
広島大学大学院
理学研究科 数理分子生命理学専攻 教授
山本 卓
ゲノム編集ツール開発の背景
ゲノム
編集総説
CRISPRCas システム
概論
Applied
Biological
Materials 社
技術情報
DNA 2.0 社
技術情報
OriGene
Technologies 社
技術情報
Santa Cruz
Biotechnology 社
技術情報
GeneCopoeia 社
02
ゲノム編集技術の基盤となる部位特異的ヌクレアーゼは、人工ヌ
クレアーゼと RNA 誘導型ヌクレアーゼに大別されます。人工ヌク
レアーゼとして開発された第一世代のゲノム編集ツールは、Zincfinger nuclease (ZFN) です。ZFN は、目的の配列に特異的に結
合する Zinc finger リピートに制限酵素 FokI のヌクレアーゼド
メインを連結した人工ヌクレアーゼで(図1)、一組の ZFN を発
現させることによって目的の配列に DNA 二本鎖切断(DSB)を
誘導することができます。ZFN は 1996 年に報告されて以来、
ゲノム編集での多くの先駆的な研究に実績を有しています。しかし
ながら、特異性の高い ZFN の作製が難しいことから、現在広く利
用されるに至っていません。これに対して、第二世代のゲノム編集
ツ ー ル で あ る TALEN (Transcription activator-like effector
nuclease) は 作 製 が 容 易 で あ る こ と か ら、2010 年 以 降、様 々
な 作 製 方 法(Golden Gate 法)が 開 発 さ れ、TALEN に よ る 遺
伝 子 改 変 が 急 速 に 進 み ま し た(1)。TALEN は、植 物 病 原 細 菌
Xanthomonas 属の TALE タンパク質を DNA 結合ドメインに
利用した人工ヌクレアーゼで(図1)、ZFN と同様に1組のヌクレ
アーゼによって DSB を導入します。TALE タンパク質は、TALE
リピートと呼ばれる繰り返しモチーフを中心にもち、このリピート
数に応じた塩基配列数(~40bp)を認識することができるので、特
異性の高い TALEN の作製が可能です (TALEN では、~20bp を
利用している )。
RNA 誘導型ヌクレアーゼである CRISPR (Clustered regularly
interspaced short palindromic repeats)/ Cas9(CRISPRassociated Protein9) は、2013 年の始めに彗星のごとく現れ
ました(2)。人工ヌクレアーゼが、標的配列への結合に DNA 結
合ドメイン(タンパク質)を利用するのに対して、CRISPR/Cas9
は、RNA と標的 DNA の塩基対形成を利用します。細菌や古細菌
は、切 断 し た 外 来 DNA( フ ァー ジ な ど ) を CRISPR 領 域 に 取
り 込 み、こ れ を 鋳 型 と し た 短 鎖 の crRNA (CRISPR RNA) を 合
成 し ま す。さ ら に、crRNA と 別 の 短 鎖 RNA で あ る tracrRNA
(transactivating CRISPR RNA) お よ び ヌ ク レ ア ー ゼ で あ る
Cas9 の複合体が標的配列を切断します(Ⅱ型 CRISPR/Cas9)。
これによって、再び侵入してきた外来 DNA を不活性化すること
が で き る わ け で す。ゲ ノ ム 編 集 で は、crRNA と tracrRNA を1
分 子 の guide RNA(gRNA) と し て 作 製 し、gRNA と Cas9 の
2 種類の発現あるいは導入によって内在の遺伝子破壊が可能です
COSMO BIO CO., LTD.
(図 1)。現 在 ほ と ん ど の 研 究 者 が、レ ン サ 球 菌(S. pyogenes)
の Cas9 を用いており、SpCas9 では標的配列の認識に PAM
(Protospacer Adjacent Motif)と呼ばれる配列が 3 塩基(NGG)
必要とされます。CRISPR/Cas の利点は、gRNA の種類を増やす
ことによって、多重遺伝子改変が簡単に行えることで、培養細胞でも
生物個体でも多数の成功例が既に報告されています。
人工ヌクレアーゼ
ZFN
ゲノムDNA
{
ゲノム編集は、部位特異的ヌクレアーゼを用いて標的遺伝子を自
在に改変することが可能な新しい技術です。微生物から動物や植物
まで様々な生物での遺伝子改変が可能なことから、ゲノム編集はラ
イフサイエンス研究において必要不可欠な技術となることが開発
当初から予想されていました。この予想は、第二世代の編集ツール
TALEN と第三世代の編集ツールである CRISPR/Cas9 の開発に
よって現実のものとなり、ゲノム編集技術は全ての研究者のための
技術となりつつあります。特に、第三世代の CRISPR/Cas9 は簡
便かつ効率的であることから、今後のゲノム編集研究は CRISPR/
Cas9 を中心として展開していくことは疑いのないところです。ゲ
ノム編集のように開発スピードの速い技術は近年例がなく、基礎研
究のみならず応用研究での利用も積極的に進められています。本稿
では、ゲノム編集ツール開発の歴史、ゲノム編集を用いた標的遺伝子
改変、off-target 作用を抑えるゲノム編集技術の派生技術について
紹介します。
{
はじめに
DNA結合ドメイン
TALEN
DNA切断ドメイン(Fokl)
||||||||||||||||
||||||||||||||||
RNA誘導型ヌクレアーゼ
Cas9
CRISPR/Cas9
||||||||||||||||
gRNA
図 1. 各ゲノム編集ツールの概要
ゲノム編集を用いた標的遺伝子改変
ゲノム編集ツールによって導入された DSB は、細胞内の複数
の DNA 修復経路によって修復されます。主に、非相同末端連結
(NHEJ)と相同組換え修復(HR)の 2 つの経路によって修復さ
れますが、繰り返し DSB を導入することによって修復エラーを誘
導し、標的遺伝子の改変を行います。NHEJ 経路では、修復過程の
エラーによって、欠失や挿入などの変異を導入することが可能です。
これによって、遺伝子内の変異であれば、フレームシフトを引き起こ
し遺伝子が破壊されます ( 図2 )。また、HR 経路の修復では、ド
ナーベクターを共導入することによって、切断部分に外来の遺伝子
を挿入することが可能です ( 図2 )。最近では、ドナーベクターの
代わりに 1 本鎖 DNA を利用したノックインも盛んに行われてい
ます。
NHEJ 経路を利用した遺伝子破壊は、基本的に全てのゲノム編集
ツールで可能であり、多くの成功例が報告されています(3)。最近
では、微生物などこれまで標的遺伝子改変が難しかった生物種での
改変例も増えてきています。一方、HR 経路を利用したノックイン
は、細胞種や生物種によって効率が異なるので注意が必要です。HR
の活性は、細胞周期に依存しており、全くノックインできないケース
も見られます。また、ゲノム編集の効率は、細胞であれば遺伝子導入
効率、個体であればマイクロインジェクションが可能かどうかなど
実験手法によっても影響を受けます。
最近では、同時に複数箇所を切断することによって、染色体レベル
での編集も可能であることが報告されています。同一染色体上の2
箇所を切断すると大規模な欠失を作製することが培養細胞や個体で
証明されています。欠失と比較すると頻度は低いですが、同一染色体
上の 2 箇所の切断によって逆位を誘導することも可能になってき
ています。これらの染色レベルの実験を行う場合、CRISPR/Cas9
であれば複数のガイドを使うだけで実行可能です。筆者らは、最近
1 つのベクター中に 7 種類の gRNA の発現カセットを組み込ん
だ all-in-one vector を開発しており、このベクターを用いること
によって効率的に染色体レベルの改変が可能になると考えています。
お問い合わせ先:TEL:03-5632-9610 FAX:03-5632-9619 E-mail: [email protected]
ゲノム DNA
部位特異的ヌクレアーゼによる
DSB の誘導
能ドメインを連結させる技術が次々と報告され、日々驚かされてい
ます。国内の研究レベルをあげるために、基礎研究はもちろん応用研
究にもゲノム編集を積極的に利用してほしいと考えています。
文献
HR による
外来遺伝子の挿入
NHEJ の修復エラー
×
×
GFP
挿入・欠失による
遺伝子ノックアウト
GFP
遺伝子ノックイン
図 2. 部位特異的ヌクレアーゼによるゲノム編集概略
Cas9 ニッカーゼと FokI-dCas9 を用いたゲノム編集
ゲノム編集技術では、類似配列への変異導入(off-target 作用)
について注意する必要があります。標的遺伝子の遺伝子破壊が成功
する一方で、類似する配列に欠失や挿入などの変異を同時に導入す
る可能性です。off-target 作用の程度は、ゲノム編集ツールの種類
や用いる細胞や個体によって異なりますが、特にガン細胞では高い
傾向にあります(4)。
CRISPR/Cas9 においては、off-target 作用を低減させる目的
で、Cas9 の 2 つのヌクレアーゼドメインのうち 1 か所に変異
を入れた Cas9 ニッカーゼが開発されています(5)。近接する 2
箇所に gRNA を設計し、それぞれの DNA 鎖を Cas9 ニッカー
ゼにより DNA ニックを入れると(Double nicking)、その領域で
は DSB を導入された形になり、ゲノム編集が可能となります ( 図
3a)。gRNA が類似配列に結合した場合、DNA ニックが入ります
が、欠失や挿入変異は導入されません。これによって、off-target
作用を低下させることができます。
さ ら に 最 近、高 活 性 か つ off-target 作 用 を 抑 え る CRISPR/
Cas9 として、Cas9 の 2 つのヌクレアーゼドメインの両方に変
異を入れた dCas (dead Cas9) を利用した方法が開発されまし
た(6)。dCas9 の C 末端側に TALEN で利用されている制限
酵素 FokI のヌクレアーゼドメインを連結させ (FokI-dCas9)、近
接する 2 箇所に結合する gRNA と FokI-dCas9 によって標的
配列に DSB を導入できることが示されました ( 図 3)。この方法
は、1つの gRNA が類似配列に単独で結合しても DNA ニックや
DSB を導入しないため、より安全な方法であると考えられます。
Cas nikase
Cas9 (D10A)
| | | | | | | | | | | | | | | || | | | | | | | | | |
1. Cermak T, Doyle EL, Christian M, Wang L, Zhang Y,
Schmidt C, Baller JA, Somia NV, Bogdanove AJ, Voytas
DF. Efficient design and assembly of custom TALEN
and other TAL effector-based constructs for DNA
targeting. Nucleic Acids Res. 39(12): e82, 2011
2. Cong L, Ran FA, Cox D, Lin S, Barretto R, Habib N, Hsu
PD, Wu X, Jiang W, Marraffini LA, Zhang F. Multiplex
genome engineering using CRISPR/Cas systems.
Science. 339(6121): 819-823, 2013
3. Peng Y, Clark KJ, Campbell JM, Panetta MR, Guo Y,
Ekker SC. Making designer mutants in model organisms.
Development. 141(21): 4042-4054, 2014
4. Fu Y, Foden JA, Khayter C, Maeder ML, Reyon D, Joung
JK, Sander JD. High-frequency off-target mutagenesis
induced by CRISPR-Cas nucleases in human cells. Nat
Biotechnol. 31(9): 822-826, 2013
5. Ran FA, Hsu PD, Lin CY, Gootenberg JS, Konermann
S, Trevino AE, Scott DA, Inoue A, Matoba S, Zhang Y,
Zhang F.Double nicking by RNA-guided CRISPR Cas9
for enhanced genome editing specificity. Cell. 154(6):
1380-1389, 2013
6. Guilinger JP, Thompson DB, Liu DR. Fusion of
catalytically inactive Cas9 to FokI nuclease improves
the specificity of genome modification. Nat Biotechnol.
32(6): 577-582, 2014
著者プロフィール
山本 卓(やまもと たかし)
広島大学大学院 理学研究科数理分子生命理学専攻
分子遺伝学研究室 教授
●経歴
1991 年 広島大学大学院理学研究科修了
1992 年 熊本大学理学部助手
1996 年 広島大学博士(理学)
2002 年 広島大学大学院理学研究科講師
2003 年 広島大学大学院理学研究科助教授
2004 年より現職
2014 年 鳥取大学と熊本大学の客員教授、
広島大学研究拠点「ゲノム編集研究拠点」リーダー
| | | | | | | | | | | | | | | || | | | | | | | | | |
gRNA1
gRNA2
Folk-dCas9
dCas9 (D10A, H840A)
gRNA1
|||||||||||||||||||||||||||
|||||||||||||||||||||||||||
DNA 切断とメイン (Fok1)
gRNA2
図 3. ダブルニッキング法と FokI-dCas9 法の概略
今後の展望
ゲノム編集は、CRISPR/Cas9 の開発によって全ての研究者の
ための技術になったと言えます。研究者のアイディア次第でゲノム
編集を使った様々な研究が考えられます。最近、人工ヌクレアーゼ
のヌクレアーゼドメインの代わりに転写因子の活性化ドメインや抑
制ドメイン、あるいは GFP を連結させた人工タンパク質の開発が
競って進められています。Cas9 についても dCas9 に様々な機
●主な専門・研究分野
ゲノム編集、発生生物学、ゲノム生物学
●学会等活動
ゲノム編集コンソーシアム(代表)
●最近の代表的論文
1. Sakuma T, Nishikawa A, Kume S, Chayama K and
Yamamoto T. Multiplex genome engineering in human
cells using all-in-one CRISPR/Cas9 vector system.
Scientific Reports, 4: 5400, 2014
2. Sakuma T, Hosoi S, Woltjen K, Suzuki KI, Kashiwagi
K, Wada H, Ochiai H, Miyamoto T, Kawai N, Sasakura
Y, Matsuura S, Okada Y, Kawahara A, Hayashi S
and Yamamoto T. Efficient TALEN construction
and evaluation methods for human cell and animal
applications. Genes Cells, 18: 315-326, 2013
3. Ochiai H, Sakamoto N, Fujita K, Nishikawa M, Suzuki
KI, Matsuura S, Miyamoto T, Sakuma T, Shibata T and
Yamamoto T. Zinc-finger nuclease-mediated targeted
insertion of reporter genes for quantitative imaging of
gene expression in sea urchin embryos. Proc Natl Acad
Sci U S A, 109: 10915-10920, 2012
お問い合わせ先:TEL:03-5632-9610 FAX:03-5632-9619 E-mail: [email protected]
COSMO BIO CO., LTD.
ゲノム
編集総説
CRISPRCas システム
概論
Applied
Biological
Materials 社
技術情報
DNA 2.0 社
技術情報
OriGene
Technologies 社
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Santa Cruz
Biotechnology 社
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GeneCopoeia 社
03
概論
CRISPR/Cas システム
非常に優れたゲノム編集システム
CRISPR-Cas(clustered regularly interspaced short
palindromic repeats-CRISPR associated proteins)シ ス テ ム
は、細菌や古細菌においてウイルスやプラスミドといった遺伝的要
素の侵入物を標的し、排除するよう進化した適応免疫の一つである。
これらのシステムは、cas 遺伝子カセットと外来性 DNA に由来
して、遺伝記憶となる短鎖と特徴的な「スペーサー」配列を間に挟
んだ一連の直列反復配列をコードする CRISPR アレイから構成さ
れる。転写および CRISPR 座位の成熟を経て、Cas タンパク質と
ともに外来性 DNA 検出の監視システムとして機能する CRISPR
RNAs(crRNAs)が産生され、やがて RNA にガイドされた干渉
により外来性 DNA を崩壊へと導く。細菌性Ⅱ型 CRISPR-Cas シ
ステム由来のヌクレアーゼ Cas9 は形質転換された生物工学ツー
ルであり、現在ではシンプルなワトソン - クリック塩基対を基にし
たゲノム編集の重要なツールとして利用されている。簡便かつ効率
がよいことから、実質的に全てのゲノムを標的することができ、世界
中の数々の研究室が急速に採用している。さらに、本システムはゲノ
ム編集のみに留まらず、遺伝子発現のオン / オフや生細胞における
画像診断においても利用されている。
CRISPR/Cas システムの基礎
ゲノム
編集総説
CRISPRCas システム
概論
Applied
Biological
Materials 社
技術情報
DNA 2.0 社
技術情報
OriGene
Technologies 社
技術情報
Santa Cruz
Biotechnology 社
技術情報
GeneCopoeia 社
04
2007 年に、CRISPR/Cas システムが適応免疫に関与するこ
とが始めて実験的に示された。ストレプトコッカス・サーモフィル
スに溶菌性ファージを感染させると、その後ファージに対する免疫
が得られることが報告されている。その翌年、成熟した crRNA が
Cas タンパク質との複合体内でガイドとして機能し、細菌における
ウイルス DNA 増殖と干渉を誘導することが発見された。現在では
3段階で適応免疫が生ずることが知られている。
ステップ①: 侵入 DNA の短鎖配列獲得(プロトスペーサー)およ
びスペーサーとして CRISPR アレイへの挿入。これ
には、Cas タンパク質によるプロトスペーサー切断お
よび CRISPR アレイでの反復複製とその後の組み換
えが含まれる。
ステップ②:pre-crRNA の転写が生じた後、成熟 crRNA 産生プ
ロセスを経由する。何れも反復配列と侵入物標的ス
ペーサーをもつ。
ステップ③:crRNA スペーサー配列相補部位において Cas タン
パク質による外来性核酸の crRNA 先導型切断が生ず
る(干渉)。
3種(Ⅰ型、Ⅱ型、Ⅲ型)の CRISPR-Cas システムが存在し、干
渉の際、各々異なる分子機序を利用する。Ⅰ型とⅢ型システムでは
crRNA 先導型ターゲティングにおいて Cas タンパク質の大型複
合体を利用するが、Ⅱ型システムでは RNA 先導型 DNA 認識と切
断に Cas9 タンパク質のみを必要とする。このⅡ型の特性はゲノム
工学アプリケーションにおいて非常に有用であることが立証されて
いる。
Cas9-sgRNA 複合体の構造および機能
初 期 の 遺 伝 学 研 究 に よ り、細 菌 に お い て Cas9 が ウ イ ル ス 防
御 に 必 須 で あ り、侵 入 DNA に 二 本 鎖 切 断 (DSBs) を 導 入 し、
in vivo DNA 標 的 を 可 能 と す る こ と が 示 さ れ て い た。2012 年
に、Cas9 が tracrRNA と crRNA の2種 の RNA を 利 用 し て
DNA 切断を誘導することが示された。標的認識には crRNA 配
列との塩基対形成と標的配列隣接部位の PAM の存在が必要であ
COSMO BIO CO., LTD.
る。tracrRNA-crRNA 複合体は sgRNA として設計することが
できる。5' 末端の 20 塩基配列が DNA 標的部位をワトソン-
クリック塩基対形成により決定し、3' 末端の二本鎖ループ構造が
Cas9 に結合するという2つの重要な特色をもつ。本発見により、
sgRNA 内の 20 塩基のガイド配列を変更することで、PAM 配列
に隣接した如何なる DNA 配列をも標的できるシステムが構築され
た。TALEN や ZFN のような、各 DNA 標的部位に対応したタ
ンパク質エンジニアリングが必要となるゲノム編集手法と異なり、
CRISPR-Cas9 システムではガイド RNA 配列の変更のみで標的
ゲノムおよびそれに対する特異性を変更することができる。
お問い合わせ先:TEL:03-5632-9610 FAX:03-5632-9619 E-mail: [email protected]
Cas9/sgRNA を利用したゲノム工学
CRISPR/Cas9 システムは、カスタム化(標的遺伝子の変更や
複数遺伝子のターゲット)が容易であることから、現在、細菌、寄
生生物、ゼブラフィッシュ、マウスおよびヒト細胞をはじめとした
膨大な種類の細胞や生物種において、そのゲノム編集または修正に
利用されている。カスタムデザインされた sgRNAs と共にヒト細
胞(胚胎性腎臓細胞、慢性骨髄性白血病細胞、iPS 細胞など)内で
発現させると Cas9 はゲノム DNA 内に DSBs を産生し、その
後、NHEJ( 非相同末端結合 ) により修復され遺伝子破損を生ずる
か、HDR( 相同組換え修復 ) によりドナー遺伝的配列の挿入が生
ずる。決定された部位に DSBs を導入することで、肺がん、急性
骨髄性白血病およびユーイング肉腫において生ずるものと類似した
染色体転座をもつヒト細胞株および初代培養細胞が産生される。さ
らに、multiplexing として知られる複数の sgRNA を用いた複
数座位の同時標的も可能であることが報告されている。CRISPRCas9 は既にβ型地中海貧血症、チロシン血症および嚢胞性線維症
といった特定遺伝子内の変異修復にも使用されている。したがって、
CRISPR-Cas9 は、ゲノム再編成研究や癌などのの疾患発生のさら
なる理解においてロバストかつ順応性のあるツールとなり得ると同
時に遺伝学を基盤とした治療の可能性を秘めている。
参考文献
Barrangou, R. et al . CRISPR provides acquired
resistance against viruses in prokaryotes. Science
315, 1709–1712 (2007)
Jinek, M. et al. A programmable dual-RNA-guided DNA
endonuclease in adaptive bacterial immunity. Science
337, 816–821 (2012)
Jinek, M. et al . RNA-programmed genome editing in
human cells. eLife 2, e00471, (2013)
Cong, L. et al. Multiplex genome engineering using
CRISPR/Cas systems. Science 339, 819–823 (2013)
Mali, P. et al . RNA-guided human genome engineering
via Cas9. Science 339, 823–826 (2013)
その他の応用
・生細胞のイメージング
CRISPR/Cas システムでは、gRNA により如何なる配列も標
的・編集することができるため、生細胞における特定染色体部位の
イメージングへの応用が期待できる。ヌクレアーゼドメインが非活
性化された修正型 Cas9 タンパク質(dCas9)を蛍光タンパク質
(EGFP など)に融合させ、特異的にデザインされた sgRNA とと
もに用いることで、dCas9 は生細胞における翻訳領域および非翻
訳領域の DNA 画像化に利用することができる。このようなイメー
ジングツールは、生細胞における天然の染色体の高次構造動態研究
用に用いられている現在の技術改良に実質上利用できる可能性があ
る。蛍光タンパク質または小分子を sgRNA にカップリングできる
可能性もあり、Cas9 を利用した多色画像化に新たな方略を与える
ことが考えられる。
・遺伝子制御
Cas9 の主な特徴はガイド RNA 配列と PAM により決定さ
れた DNA 部位に結合できることであり、DNA の永久的な改変を
超えた応用が可能となる。特に、dCas9 と設計された sgRNA の
組み合わせにより、ゲノムワイドスケールでの標的遺伝子制御へ
と目的が移行している。CRISPRi として知られるプロセスでは、
RNAP の DNA アクセスを dCas9 により遮断することもできる
ため、細菌とヒト細胞において転写を可逆的に抑止できる。さらに、
RNAP ω - サブユニットなどの調節ドメインと融合させたキメラ
dCas9 を構築することで、CRISPRi を効果的な遺伝子活性化へと
利用できる可能性も考慮されている。
Sternberg, S. H. et al . DNA interrogation by the
CRISPR RNA-guided endonuclease Cas9. Nature 507,
62–67 (2014)
ゲノム
編集総説
Jinek, M. et al . Structures of Cas9 endonucleases
reveal RNA mediated conformational activation.
Science http://dx.doi.org/10.1126/science.1247997
(2014)
CRISPRCas システム
概論
van der Oost, J. et al . Unravelling the structural and
mechanistic basis of CRISPR–Cas systems. Nature
Rev. Microbiol . 12, 479–492 (2014)
Applied
Biological
Materials 社
Anders, C. et al . Structural basis of PAM-dependent
target DNA recognition by the Cas9 endonuclease.
Nature http://dx.doi.org/10.1038/ nature13579
(2014)
技術情報
Cosmo Bio would like to acknowledge and thank the
OriGene Technologies, Inc. for providing CRISPR/Cas
system information presented here.
技術情報
Acknowledgements
技術情報
This airticle was put together with scientific input from Jennifer
A.Doudna, Tom Riis and Sam
Sternberg, Department of Molecular and Cell Biology and
Department of Chemistry,Howard Hughes Medical Institute,
University of California Berkeley,Berkeley, California 94705, USA.
DNA 2.0 社
OriGene
Technologies 社
Santa Cruz
Biotechnology 社
The authors have no affiliation with OriGene.
技術情報
© 2014 Nature Publishing Group. All rights reserved.
http://www.nature.com/nrmicro/posters/crispr/ index.htm
GeneCopoeia 社
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COSMO BIO CO., LTD.
05
Applied Biological Materials 社
iCRISPR/Cas9 ゲノム編集用ガイド RNA ライブラリー
Applied Biological Materials 社
ゲノム
編集総説
CRISPRCas システム
概論
Applied
Biological
Materials 社
WEBへどうぞ
Applied Biological Materials 社
APB
iCRISPR/Cas9 ゲノム編集用ガイド RNA ライブラリー
記事ID:13443
低コスト! CRISPR/Cas9 技術を用いたゲノムワイド sgRNA コレクション
ゲノム編集において、RNA 先導型の最新のエンドヌクレアー
ゼ ツ ー ル に CRISPR /Cas9 シ ス テ ム (Clustered Regularly
Interspaced Short Palindromic Repeats:規則的な間隔をもっ
てクラスター化された短鎖反復回文配列 ) があります。本システム
では、単鎖ガイド RNA(sgRNA)を使用して特異性の高いゲノム
破壊や置換を行います。この簡便かつロバストなゲノム編集システ
ムは真核生物細胞に利用可能です。相同組換えにより対象ゲノムを
希望する部位で切断することで、非常に簡便に、自由に、かつ効果的
に遺伝子発現抑制や遺伝子編集を実現します。
ウイルスベクターや遺伝子工学の分野で長年実績のある Applied
Biological Materials 社 で は、こ の 最 新 の 技 術 を 利 用 す る た め
の製品を低価格でご提供しています。非組込み型アデノウイルス
sgRNA 発現システムをはじめ、全ヒト、マウス、およびラット遺
伝子を標的とした独自のゲノムワイド sgRNA ライブラリー発現
用のレンチウイルスシステムを開発しました。レンチウイルスシ
ステムは、実験手技等に左右されず、簡便で、Applied Biological
Materials 社独自の Cas9 ヌクレアーゼやニッカーゼ発現ベク
ターおよびウイルスと補完することで、iCRISPR システムは遺伝
子ノックアウト実験において理想的な手法となります。
Cas9 発現
レンチウイルスベクター
パッケージ済みレンチウイルス
○ パッケージ済みアデノウイルス
○
○
ゲノムワイド iCRISPR sgRNA ライブラリー
野生型 Cas9 ヌクレアーゼ
改変型 Cas9 ニッカーゼ
○ レンチウイルスベクター
○ パッケージ済みレンチウイルス
○ パッケージ済みアデノウイルス
○ ヒト、マウス、ラット
●
●
受託サービス
●
●
ノックアウト細胞株構築
カスタム標的レンチウイルス sgRNA ライブラリー
自由度が高く多様性のあるゲノム編集ツール“ iCRISPR システム”
iCRISPR システムは、特異性の高いゲノム崩壊と置換が可能で
す。この簡便かつロバストなシステムでは、
(1) Cas9 ヌクレアーゼまたは Cas9 ニッカーゼ
(2) 標的特異的単鎖ガイド RNA(sgRNA)
の 2 つの要素が必要です。
レンチウイルスベクターの形質転換、レンチウイルスのトランスダ
クション、またはアデノウイルスのトランスダクションにより標的
細胞や宿主における Cas9 発現が生じます。sgRNA がゲノム上
の標的配列をみつけると、Cas9 ヌクレアーゼがゲノム DNA の両
鎖を切断し二本鎖切断(DSBs)が生じます。これが修復されると
挿入欠失フレームシフトまたは早期の停止コドンが生じます。
二本鎖切断(DSBs)
技術情報
DNA 2.0 社
技術情報
挿入欠失フレームシフト 早期の停止コドン
OriGene
Technologies 社
技術情報
Santa Cruz
Biotechnology 社
非相同末端結合による修復
技術情報
GeneCopoeia 社
06
COSMO BIO CO., LTD.
お問い合わせ先:TEL:03-5632-9610 FAX:03-5632-9619 E-mail: [email protected]
Applied Biological Materials 社
iCRISPR/Cas9 ゲノム編集用ガイド RNA ライブラリー
Cas9 ヌクレアーゼによる相同組換え修復(HDR)
Applied Biological Materials 社
細胞は、非相同末端結合(NHEJ)経路のほかに相同組換え修
復(HDR)により DNA 修復を行うことができ、この場合、ゲノ
ム DNA に核酸変異の導入を行うことがあります。目的配列をもつ
DNA 修復の鋳型は、通常、sgRNA/Cas9 とともに細胞に形質転
換しますが、二本鎖切断に近接の上流または下流の配列と高度に相
同性をもつ必要があります。Cas9 ヌクレアーゼにより導入された
二本鎖切断は、HDR を受けた後、特定変化がゲノム DNA 内に永
久に導入されます。これは、改変型 Cas9 ニッカーゼにより導入さ
れた一本鎖切断でも同様です。
特異性と精度を改変した Cas9 ニッカーゼ
Cas9 ヌクレアーゼの触媒領域の1つを不活性化させた「ニッ
カーゼ」は、ゲノム DNA 上の標的部位における二本鎖切断ではな
く一本鎖切断を行います。期待する二本鎖切断を行うため、1つでは
なく2つの gRNAs をゲノム DNA の近接領域(20 塩基未満)
の両鎖に配置した場合、ガイド RNA(gRNA)がミスマッチをもっ
て期待しない DNA 部位に結合しオフターゲット作用を生ずること
がありますが、改変したニッカーゼによりをこの現象を削減するこ
とができます。ゲノム DNA 上の期待しない単鎖の切れ目は、無傷
の反対鎖を鋳型として相同配向性修復(HDR)経路により直ちに修
復されます。
Guide RNA 要件
インデルフレーム
シフト誘導
ゲノム
編集総説
CRISPRCas システム
概論
HDR 誘導
推奨アプリケーション
Cas9
ヌクレアーゼ
各標的遺伝子につき
1つのgRNA
Yes
最も効果的
Yes
InDel, HDR (正確さが重要で、オフターゲット作用が
それほど問題でない場合)
Cas9
ニッカーゼ
各標的遺伝子につき
1つのgRNA
少々
Yes
あまり効果的で
ない
HDR経路のみ、InDel生成を必要としない場合
Cas9
ニッカーゼ
各標的遺伝子につき
2つのgRNA
Yes
非常に効果的
Yes
InDel, HDR(正確さが重要、かつオフターゲット作用が
問題視される場合)
Cas9の種類
ヌクレアーゼ(野生型)
ニッカーゼ(改変型)
製品種
Applied
Biological
Materials 社
技術情報
DNA 2.0 社
メーカー略号
品番
希望販売価格
レンチウイルスベクター
APB
K002
¥69,000
レンチウイルス
APB
K003
¥111,000
アデノウイルス
APB
K004
¥111,000
レンチウイルスベクター
APB
K005
¥69,000
レンチウイルス
APB
K006
¥111,000
アデノウイルス
APB
K007
¥111,000
技術情報
OriGene
Technologies 社
技術情報
Santa Cruz
Biotechnology 社
技術情報
GeneCopoeia 社
お問い合わせ先:TEL:03-5632-9610 FAX:03-5632-9619 E-mail: [email protected]
COSMO BIO CO., LTD.
07
Applied Biological Materials 社
iCRISPR/Cas9 ゲノム編集用ガイド RNA ライブラリー
Applied Biological Materials 社
ゲノムワイド sgRNA(単鎖ガイド RNA)コレクション
CRISPR/Cas9 シ ス テ ム を 利 用 す る こ と で、非 常 に 特 異 的 な
ゲ ノ ム 編 集 が 可 能 に な り ま す。標 的 特 異 的 な 単 鎖 ガ イ ド RNA
(sgRNA)に先導され、Cas9 ヌクレアーゼがゲノム DNA の二
本鎖を巻き戻し sgRNA による標的配列を認識して両鎖を切断し
ます。これにより生ずる二重鎖切断は非相同末端結合(NHEJ)経
路により修復され、標的遺伝子の翻訳領域が崩壊します。Applied
Biological Materials 社は、レンチウイルスベクターやすぐに実
験にご便用頂けるレンチウイルスおよびアデノウイルスを利用し
た、ヒト、マウス、およびラット遺伝子を標的とするゲノムワイド
iCRISPR sgRNA ライブラリーを開発しました。
Applied Biological Materials 社 の レ ン チ ウ イ ル ス iCRISPR
sgRNA ベクターおよびウイルスは、1種類ずつ、または 3 種の
セットでご提供していますので、実験条件にあわせてお選びくださ
い。個別使用または複数をプールして使用するなど、実験系に適した
遺伝子ノックアウト実験を行って頂けます。
Applied
パッケージ済み
Biological
レンチウイルス
Materials社より
ご提供
■ 野生型 Cas9 ヌクレアーゼ用 sgRNA コレクション
品名
製品種
レンチウイルスベクター
各 sgRNA
3 種の sgRNA セット
■ ニッカーゼ(改変型 Cas9)用 sgRNA コレクション
価格
品名
¥38,000
各 sgRNA
¥119,000
アデノウイルス
¥251,000
アデノウイルス
ご照会
レンチウイルスベクター
¥105,000
レンチウイルスベクター
¥210,000
レンチウイルス
¥279,000
レンチウイルス
ご照会
3 種の sgRNA セット
1
コスモ・バイオ WEB ページの詳細検索をクリック。
2
キーワード検索にご希望の遺伝子名、品番に「K* ( アスタリスク )」、
メーカー略号に「APB」を入力して検索してください。
例:DUX4L7
3
検索結果が表示されます。
品番、品名、数量を指定し、ご利用の代理店様へご注文ください。
DNA 2.0 社
技術情報
OriGene
Technologies 社
Santa Cruz
Biotechnology 社
技術情報
GeneCopoeia 社
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お問い合わせ先:TEL:03-5632-9610 FAX:03-5632-9619 E-mail: [email protected]
レンチウイルス
価格
¥76,000
レンチウイルス
技術情報
08
製品種
レンチウイルスベクター
CRISPRCas システム
概論
技術情報
遺伝子発現レベル
変化
iCRISPR sgRNA アデノウイルスは、特に導入困難な細胞種を始
めとした幅広い標的細胞において、非組込み型かつ高い効率でのゲ
ノム編集に適しています。
ゲノム
編集総説
Applied
Biological
Materials 社
Cas9とsgRNAウイルス
を同時導入した標的細胞
¥238,000
Applied Biological Materials 社
WEBへどうぞ
Applied Biological Materials 社
iCRISPR プール型カスタム sgRNA レンチウイルスライブラリー作製サービス
sgRNA レンチウイルス
プール型 sgRNA レンチ
ウイルスライブラリー
sgRNA プールと Cas9
レンチウイルスを標的細胞
に同時に導入
【 お問い合わせ先 】
ご質問・ご不明の点は技術サービス部 テクニカルサービスグループまでお問い合せください。
また、秘密保持契約のご希望につきましても、下記までご連絡をお願いいたします。
TEL : 03-5632-9615
FAX : 03-5632-9614
E-mail: [email protected]
WEBへどうぞ
Applied Biological Materials 社
APB
iCRISPR カスタムノックアウト細胞作製サービス
本サービスでは、如何なる細胞株のどの遺伝子であってもノック
アウト致します。Applied Biological Materials 社へご希望の標
的細胞と、ノックアウトしたい遺伝子の生物種、遺伝子名およびアク
セッション番号をご連絡頂くだけです。ゲノム編集に成功した細胞
は、厳格な品質管理と遺伝子ノックアウトの検証後、お客様にお届け
致します。
Applied Biological Materials 社
プール型カスタム sgRNA レンチウイルスライブラリーを利用
することで最大 100 種の標的遺伝子を、一度にノックアウトする
ことができます。本商品はお客様のご研究に合わせて作製しますの
で、特に遺伝子ファミリーや経路のノックアウトに有用です。プール
型レンチウイルス粒子をご提供致します。ご希望の遺伝子の生物種、
遺伝子名およびアクセッション番号を表記した標的遺伝子リストを
コスモ・バイオへご連絡ください。
記事ID:13443
iCRISPR カスタムノックアウトサービス
APB
ゲノム
編集総説
記事ID:13443
CRISPRCas システム
概論
sgRNA および
Cas9 ウイルスを
標的細胞に導入
Cas9
guide
RNA
Applied
Biological
Materials 社
技術情報
標的遺伝子
ノックアウト
二本鎖切断
DNA 2.0 社
技術情報
ワイルドタイプ ノックアウト
NHEJ による修復後、
挿入欠失変異
OriGene
Technologies 社
技術情報
【 お問い合わせ先 】
Santa Cruz
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また、秘密保持契約のご希望につきましても、下記までご連絡をお願いいたします。
技術情報
TEL : 03-5632-9615
FAX : 03-5632-9614
E-mail: [email protected]
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GeneCopoeia 社
COSMO BIO CO., LTD.
09
■ 技術情報
Applied Biological Materials 社
Applied Biological Materials 社
iCRISPR/Cas9 ゲノム編集用製品
iCRISPR/Cas9 ゲノム編集用製品 FAQ
CRISPRCas システム
概論
技術情報
【01】Applied Biological Materials 社で保証できるノックアウト効率を教えてください。
また、3 種の gRNA の何れも標的をノックアウトできなかった場合、他の候補を提供してもらえますか?
A
Applied Biological Materials 社の経験では、デザインしたコンストラクトの 90% 以上が 20 ~ 90% の細胞において完全な
ノックアウトを達成しています。感染後ピューロマイシン選択した細胞の 50% 以上において、ほとんどのコンストラクトから完全な
ノックアウトが得られています。実証例から sgRNA は shRNA や siRNA よりかなり優秀であることが示唆されます。3 コンスト
ラクトのいずれからも顕著なノックアウトが得られないというのは非常にまれな状況です。
ゲノム
編集総説
Applied
Biological
Materials 社
Q
もし、いずれのコンストラクトを用いても適切なノックアウトが得られない場合、異なる 3 種のコンストラクトを無料でデザイン致し
ます。交換は1回のみに限ります。交換には細胞のモニターが必須条件で、Surveyor アッセイの分析証明をご提供ください。標的配列
増幅用 PCR プライマーを設計し T7E で分解させます。
Q
【02】本システムを長鎖ノンコーディング RNA に使用した経験はありますか。
A
本システムでは、長鎖ノンコーディング RNA や miRNA、もしくは短鎖 DNA 断片を二本鎖 sgRNAs によりノックアウトすること
も可能です。しかし、ノックアウト効率はタンパク質コーディング遺伝子に比べて非常に低く、~ 1% 程度です。したがって、単一細胞
クローニングが必要となります。Applied Biological Materials 社では、lncRNA の最初と最後を標的する 3 種の sgRNAs をデ
ザインし、今後上市する計画もあります(3x2 コンストラクト)。標的 lncRNA のノックアウト用に 3x3 の組み合わせがあるため、
PCR スクリーニングにより最良の組み合わせを確認します。その後、2つの最もよい sgRNAs をトランスダクションした後、単一細
胞クローニングします。1 ~ 5% のクローンにおいて lncRNA の完全ノックアウトが期待されます。
Q
【03】ノックアウトがみられるまでにどのくらいの時間が必要ですか。
A
ピューロマイシン選択後1週間です。
Q
【04】推奨する培養条件を教えてください。
A
レンチウイルストランスダクションの標準型プロトコールに準ずるとともに、ご利用の特定細胞に対して最適化された培養条件をお確
かめの上ご利用ください。
Q
【05】sgRNA の代替品を要求する場合のガイドラインを教えてください。
A
Applied Biological Materials 社では、セットでご購入いただいた 3 種の sgRNA レンチウイルスコンストラクトのうち少なくと
も1つは、トランスダクションと薬物選択後、50% 以上の細胞においてフレームシフト変異による完全な遺伝子ノックアウトを示すこ
とを保証します。遺伝子ノックアウト効率は Surveyor アッセイで素早く検査でき、ウェスタンブロットまたは他の機能解析により確
かめることができます。非常にまれな事例ではありますが、もし顕著な効果が得られない場合は、異なる sgRNA 配列をもつ 3 種の新
規コンストラクトを代替品として1回のみご提供致します。代替品提供をご希望の場合、まず Surveyor アッセイ結果をご提示頂いた
上で Applied Biological Materials 社にて内容を確認致します。代替品セットは保証対象外です。もしこれらのコンストラクトも効果
がないと考えられる場合、おそらく理由は原因不明であると思われます。
Applied Biological Materials 社では、本技術の成功に向けてその義務と責務を制限するため、如何なる sgRNA レンチウイルス製
品においても代替品のご提供は1回のみとしています。お問い合わせ頂く前に、お客様において MOI の増大(10 程度まで)、感染時
間(最長 72 時間)およびノックアウトアッセイの前にクローンのスクリーニングを行うなど、可能な限り実験系の最適化を行ってい
ただけますようお願い致します。
DNA 2.0 社
技術情報
OriGene
Technologies 社
技術情報
Santa Cruz
Biotechnology 社
技術情報
GeneCopoeia 社
10
COSMO BIO CO., LTD.
お問い合わせ先:TEL:03-5632-9610 FAX:03-5632-9619 E-mail: [email protected]
Applied Biological Materials 社
iCRISPR/Cas9 ゲノム編集用 iCRISPR 製品 プロトコール
■ E.coli DH5 αコンピテントセルのサブクローニング効率
最良の結果を得るために Applied Biological Materials 社の ProClone™ Competent Cells(品番: E003)をご利用ください
コンピテントセルは 4x1.25mL 容量で提供されます。-80℃で保存してください。
● 凍結溶解の繰り返しを避けるため、分注保存してください。
● 湿った氷上にバイアルを静置して溶解します。細胞を分注する前に新しいチューブを冷却しておきます。
● 溶解後、ゆっくりと反転させて細胞を混合します。
● 直ちに 50 μ L ずつ分注し、ドライアイス/ 95% エタノール内で再凍結します。
●
●
■ 形質転換プロトコール
1. ProClone™ Competent DH5 α cell を湿った氷上で溶解する。
2. 1 μ L のプラスミドを添加する。プラスミド濃度が既知の場合、10ng/ μ L に希釈して 1 μ L 使用する。
チューブを軽くたたいて混合する。氷上で 30 分間静置する。
Applied Biological Materials 社
Applied Biological Materials 社では、プラスミド DNA を 10mM Tris に入れてご提供しており(特別なご指定のない限り)、標準的な
DH5 α E.coli 株に直接形質転換することを想定しています。Applied Biological Materials 社より入手した何れのプラスミドを増幅す
る場合も、DH5 αコンピテントセルに形質転換し、単一コロニーを拾って一般的なプラスミドミニプレップを行います(タンパク質発現用
E.coli 株はプラスミド抽出や精製に向かない場合があるため、プラスミド増幅への使用はお奨めしません。)。プラスミドの抗生物質選択を確
認してください。コードされる耐性遺伝子は通常、アンピシリン、カナマイシンまたはスペクチノマイシンですが、テトラサイクリンやクロラ
ムフェニコールをもつ場合もあります。Applied Biological Materials 社の pLenti ベクターは全て高コピー数プラスミドです。
iCRISPR/Cas9 ゲノム編集用製品
プラスミド増幅
3. 42℃のウォーターバス内で 45 秒間きっちりと熱処理する。
4. チューブを氷上に戻し2分間静置する。
5. 150 μ L の滅菌済み LB 培地を加え、37℃、240rpm に設定した培養振とう器内で1時間振とう培養する。
6. 全量を適切な抗生物質を含む LB 寒天培地上に撒く(濃度は下記参照)。
7. 37℃で一晩培養(16 時間程度)してコロニーを形成させる。もしコロニーが凝集している場合は、1 μ L のセルを 100 μ L の LB
に加え、新しい抗生物質入り LB プレートにまく。
8. 4 ~ 10mL の抗生物質を含む LB 培地に単一コロニーを接種する。37℃、240rpm に設定した震盪培養器で一晩(16 ~ 18 時間)
培養する。
ゲノム
編集総説
9. 一般的なミニプレッププロトコールに準じてプラスミドを単離する。
CRISPRCas システム
概論
抗生物質選択
KanR: 50 μ g/ml カナマイシン
AmpR: 100 μ g/ml カルベニシリン/アンピシリン
SpecR: 50 μ g/ml スペクチノマイシン
TetR: 12.5 μ g/ml テトラサイクリン
CamR: 25 to 34 μ g/ml クロラムフェニコール
Applied
Biological
Materials 社
技術情報
DNA 2.0 社
レンチウイルスパッケージング
技術情報
以下は、最大 106 IU/mL タイターの組換え型レンチウイルス粒子産生用プロトコールです。実験結果の評価の手だてとするため、ネガティ
ブコントロール(DNA またはトランスフェクション試薬なし)のご使用をお奨めします。
OriGene
Technologies 社
レンチウイルスパッケージングを始める前に、適切な量の発現 DNA(10 μ g プラスミド/ 10 cm ディッシュ)があることを確認し
ます。DNA 増幅ステップでは、通常、標準的な細菌の形質転換プロトコールを利用します。Applied Biological Materials 社では、E.coli
DH5 α株によりレンチウイルスパッケージング用プラスミドが高収量で産生でき、また組換えが生ずるリスクが低いことを確認しているた
め、ご提供した DNA プラスミドの増幅には E.coli DH5 α株のご利用をお奨めします。
技術情報
Santa Cruz
Biotechnology 社
技術情報
GeneCopoeia 社
お問い合わせ先:TEL:03-5632-9610 FAX:03-5632-9619 E-mail: [email protected]
COSMO BIO CO., LTD.
11
■ 技術情報
Applied Biological Materials 社
■ レンチウイルスパッケージングプロトコール
Applied Biological Materials 社
iCRISPR/Cas9 ゲノム編集用製品
1日目
1. 午後に~ 1.2 x 107 293T 細胞を 10cm ディッシュに播種する。
2. 細胞密度が70~80%であることを確認する。
3.
a) 10 cmディッシュごとに下記に準じてトランスフェクション複合溶液を調製する。
溶液A: 20 μgのDNAプラスミド(発現ベクター10μgとApplied Biological Materials社の第2世代
(品番:LV003)または第3世代(品番:LV053)パッケージングミックス 10μg)を1mLの無血
清かつ抗生物質を含まない培地に加えて希釈する。
2日目
(ステップ2~6を
トランスフェクション当日の
午前中に行う)
溶液B: 80μLの LentiFectin™ トランスフェクション試薬(品番:G074)を1mLの無血清かつ抗生物
質を含まない培地に添加する。
b) 上記溶液を室温で5分間静置する。
c) 溶液Aと溶液Bをよく混合し、室温で20分間静置する。これによりトランスフェクション複合体が形成さ
れる。
4. 4.5mLの無血清培地をトランスフェクション複合体に添加する。
5. 10cmディッシュに播種している細胞より培地を除去する。
6. ステップ4で調製したトランスフェクション複合体を細胞に添加し、37℃で5~8時間培養する。細胞が外れ
ないようディッシュの壁面よりゆっくりと混合溶液を添加する。
7. 10cmディッシュに0.65mLのFBSを添加し、37℃で一晩培養する。
8. 細胞よりトランスフェクション培地を除去する。
9. 10mL の完全培養培地を細胞に添加する。
10. 37℃で 24 時間培養する。
3日目
11. 培養ディッシュより上清培地を回収する。
12. 上清を 4℃、3000rpm で 15 分間遠心し、細胞の残渣を沈降させる。
13. 清澄な上清を新しいチューブに移しとり、低タンパク質結合性の 0.45 μ M 滅菌フィルターでろ過する。
14. 最初に回収したウイルスタイターは 106 IU/mL 程度である。ろ過した上清は in vitro 感染や濃縮に使用
4日目
(回収)
できる。または、-80℃で保存することもできる。凍結溶解の繰り返しによるウイルスタイターの低下を避
けるため、長期保存の場合は分注することが望ましい。
15. 1 回目の回収後、細胞に 10mL の完全培地を加えて 37℃でさらに 24 時間培養し、2 回目の回収を行
うこともできる。1回目のウイルス上清を 4℃で一晩保存し、翌日に2回目のウイルス上清をこれに追加す
ることもできる(上清を凍結するとタイターの顕著な低下を招く恐れがある)。
16. ステップ 11 ~ 13 に準じて 2 回目の上清回収を行い、1 回目のウイルス上清に加える。
ゲノム
編集総説
CRISPRCas システム
概論
5日目
注: VSV-G 糖タンパク質発現は 293T 細胞の融合の原因となるため、融合細胞として知
られる大型の複数核細胞様式を示す。この形態変化は正常であり、レンチウイルス産生
には影響しない。
17. ウイルスタイターが 106 IU/mL より高い場合、Applied Biological Materials 社の qPCR レンチウイ
ルスタイターキット(品番:LV900)を用いて迅速かつ簡単にタイター測定が可能。濃縮が必要な場合に
は、Applied Biological Materials 社の Ultra Pure Lentiviral Purification Kit(品番:LV998)によ
りウイルス濃縮をすることも可能。
Applied
Biological
Materials 社
技術情報
DNA 2.0 社
技術情報
OriGene
Technologies 社
技術情報
Santa Cruz
Biotechnology 社
技術情報
GeneCopoeia 社
12
標的細胞へのレンチウイルス感染
重要な注意事項
哺乳動物細胞へのトランスダクション効率は実験条件下によって顕著に異なります。感染に使用したウイルス濃度、ウイルスへの曝露
時間、およびウェルやプレートの生長領域なども関与します。対象とする標的細胞における望ましい感染効率(MOI)を知るのに必要な
ウイルス濃度を決定するためには、レポーター遺伝子をもつウイルス粒子(例:GFP コントロール 品番:LV006 またはβ -gal コン
トロールレンチウイルス 品番:LV007)を利用したトランスダクションの予備試験を 1 μ l, 5 μ l, 10 μ l および 100 μ l. と
いった異なる容量範囲において複数回行うことが理想的です。この予備試験結果を最も感染細胞の割合が高くなると思われる至適濃度決
定に利用します。
抗生物質選択をしない場合、下流のアッセイはトランスダクションから 48 ~ 72 時間後に行います。抗生物質選択を行うか否か
は標的細胞のトランスダクション効率や増殖率ならびに計画している生物学的アッセイに応じて決定します。感染効率の高い細胞(例:
HEK293, HT1080, HeLa, MDA-MB0468 細胞など)の場合、抗生物質選択を行うことなくほとんどの生物学的アッセイを行うこと
ができます。感染に耐性の細胞に対しては、レンチウイルスコンストラクトを提要発現しているクローンのみを選択して下流のアッセイ
を行うことが理想的です。
COSMO BIO CO., LTD.
お問い合わせ先:TEL:03-5632-9610 FAX:03-5632-9619 E-mail: [email protected]
Applied Biological Materials 社
■ 感染プロトコール
下記のプロトコールは一般的なガイドラインとしてご提供していますので、標的細胞へのトランスダクションにおける最適条件を決定するた
めの出発点としてご利用ください。
2. ポリブレンを完全培地に加えて 8 μ g/mL 濃度とする。ウェルより生育培地を除去し、ウェルごとに 0.5mL のポリブレン/培地混合
溶液を添加する(培地容量は使用するプレートサイズに準じて適宜変更する)。標的細胞の感染効率が低い場合、ViralPlus Transduction
Enhancer ( 品番:G698) を 1:100(または最適化させた希釈率)で添加する。
3. 予備実験より、標的細胞に対する有効な MOI が決定できている場合、これに準じて適切なウイルス量を標的細胞に感染させる。Cas9 と
sgRNA レンチウイルスは標的細胞に対して同時感染することもできる。
ポジティブコントロールとして使用するウェルの1つに GFP コントロールウイルスを使用するとともに、他のウェルの1つに空のウイ
ルスコンストラクトをコントロールとして使用することをお奨めします。1つのウェルはウイルスを感染せずに放置して標準コントロール
とする。
4. 感染後、細胞を 5% CO2 存在下の 37℃で一晩培養する。
5. 培養溶液を除去し、1mL の完全培地と置換する。細胞は 5% CO2 存在下の 37℃で一晩培養する。
6. 翌日、細胞を 1:3 または 1:5 に分割(使用細胞の細胞成長率に応ずる)し、完全培地を用いてさらに 48 時間培養する。
7. 死滅曲線より決定した適切な抗生物質の最低濃度を利用して、感染細胞より定常発現細胞を選択できる。その後、ウェスタンブロット、配
列決定、surveyor アッセイといった種々の技術を利用し、ゲノム編集アッセイを行うことができる。
構築済みアデノウイルスの増幅
Applied Biological Materials 社
注: VSV-G 糖タンパク質発現は 293T 細胞の融合の原因となるため、融合細胞として知られる大型の複数核細胞様式を示す。この形態
変化は正常であり、レンチウイルス産生には影響しない。
iCRISPR/Cas9 ゲノム編集用製品
1. ウイルス感染の 24 時間前に標的細胞を 24 穴プレートの各ウェルに 0.5 × 105 細胞ずつ播種する。0.5mL の完全至適培地(血清
と、必要であれば抗生物質を含む)を添加後、5% CO2 存在下の 37℃で一晩培養する。
Applied Biological Materials 社の構築済みアデノウイルスはシードストックとしてのみご提供しています。そのため、in vitro トランスダ
クション等を行う前に増幅して頂く必要があります。in vivo 用には大容量でのウイルス産生と精製が必要となります。
重要情報
アデノウイルスシードストックは可能であれば1つずつ個別に異なる滅菌ベンチや培養装置を用いて増幅することを推奨します。もし、こ
れら機器が1つしかない場合、各ウイルスを経時的に増殖するとともに、各ウイルスを使用した後に30分間のUV照射を行います。2種類以
上のアデノウイルスを同時に使用することが相互汚染の主な原因となることから、ウイルスごとに異なるトリプシンや培地容器のご利用
をお奨めします。
ゲノム
編集総説
CRISPRCas システム
概論
■ 増幅プロトコール
1. 組換え型アデノウイルスを入手後、2 ~ 3 に分注して1つを 293 細胞内での増幅に使用する。他の分注品はシードストックとして
-70℃で保存する。
2. アデノウイルスを 60 ~ 70% の細胞密度の HEK 293 細胞で増幅する。60mm ディッシュでは 70 μ L のアデノウイルス、
100mm ディッシュでは 200 μ L のアデノウイルスを使用して細胞感染を行う。
Applied
Biological
Materials 社
技術情報
3. 95% 以上の 293 細胞がディッシュより剥離した際、細胞と培地の両方を大きめのコニカルチューブに回収する。
4. 回収した溶液を -70℃の冷凍庫かドライアイス/エタノール内で凍結後、37℃のウォーターバスで溶解する。この凍結溶解を 3 回繰り返す。
5. 3,000rpm で 10 分間、室温で遠心し、細胞片を沈渣させる。
6. 上清を新しいチューブに移す。すぐに使用する場合(2 ~ 3 週間程度)は 4℃で保存し、長期保存する場合はグリセロールを最終濃度
10% となるように加え -70℃で凍結する(1 ~ 2 年程度安定)。
7. トランスダクション手順:
ウイルスを in vitro トランスダクションに使用する場合、ほとんどのヒト細胞株においてウイルス上清がほぼ 100% の導入効率を示
すため、ウイルス上清を 2 回繰り返して CsCl 精製する必要はない。in vivo 実験の場合には、欠損粒子、細胞片および残余する培地成
分により顕著な免疫応答誘導が生ずることがあるため、これらを除去するために CsCl 精製は必須となる。さらに、CsCl 精製により in
vivo 注入に適したレベルのウイルス濃度に濃縮することができる。
1. トランスダクション前日に、標的細胞を 70% の細胞密度となるよう 6 穴プレートまたは 10cm ディッシュに播種する。
2. 培養培地を吸引除去し、ウイルス培養上清(6穴プレートには 1mL, 10cm ディッシュには 4-5mL)を加えて細胞を覆い、培養器
内で1時間培養する。
3. ウイルス含有培地を除去し新しい完全培地と交換する。
4. ゲノム編集はトランスダクションから 48 ~ 72 時間後にウェスタンブロット、配列決定または Surveyor アッセイなどにより評
価することができる。
お問い合わせ先:TEL:03-5632-9610 FAX:03-5632-9619 E-mail: [email protected]
COSMO BIO CO., LTD.
DNA 2.0 社
技術情報
OriGene
Technologies 社
技術情報
Santa Cruz
Biotechnology 社
技術情報
GeneCopoeia 社
13
DNA2.0 社
CRISPR/Cas9 ゲノム編集 All-in-one ベクター
DNA2.0 社
WEBへどうぞ
DNA2.0 社
DNA
CRISPR/Cas9 ゲノム編集 All-in-one ベクター
記事ID:12575
独自の NickaseNinja All-in-One ベクターで CRISPR/Cas9 技術を用いたゲノム
編集をさらに簡単に!
ゲノム編集(Genome Editing)とは、CRISPR/Cas システムや Transcription ActivatorLike Effector Nucleases(TALEN)等の技術により遺伝子特異的な破壊やレポーター遺伝
子のノックイン等を行う新しい遺伝子改変技術です。DNA2.0 社では、CRISPR/Cas9 ベク
ター、試薬、gRNA デザインソフトを含む、ゲノム編集操作用ツールセットを開発しました。画期
的な NickaseNinja™ は、単一ベクターから2つの gRNA をタンデム発現し、本品1つで全操
作が完了する All-in-One ベクターです。CRISPR/Cas9 技術の利用により複雑なゲノムを的確
に改変することが可能です。DNA 社は、無料でご利用頂ける gRNA デザインツールを WEB
上(https://www.dna20.com/eCommerce/cas9/input)にご用意しており、これを用いて
gRNA をデザインし、Electra™-CRISPR ベクターにクローニングします。
特長
CRISPR/Cas9 技術
特定領域への遺伝子挿入
特定部位における遺伝子発現のノックアウト
● 簡便: Electra™ システムで gRNA のカセットクローニング E.coli 、酵母、
および哺乳類細胞ゲノムに対応
●
●
NickaseNinja™ オールインワンベクター
高精度、オフターゲット作用を低減
簡便、単一ベクターの形質転換
● Nikase ベクターへのタンデム gRNA クローニング
● 2A- 結合型レポータより選択: DasherGFP, PaprikaRFP、レポータなし
● 最小限のオフターゲット作用
●
●
図 1. CRISPR/Cas9 システム作用機序概要
CRISPR/Cas9 ベクター
ゲノム
編集総説
CRISPRCas システム
概論
Applied
Biological
Materials 社
技術情報
DNA 2.0 社
技術情報
OriGene
Technologies 社
技術情報
Santa Cruz
Biotechnology 社
技術情報
GeneCopoeia 社
14
使用目的
特定領域への遺伝子挿入
特定部位における遺伝子発現のノックアウト
● E.coli 、酵母、および哺乳類細胞のゲノム編集操作
●
●
CRISPR/Cas9 ベクターの特長
NickaseNinja™ の利用
単一ベクターに 2 つの gRNA がタンデムで組込まれ、トランスフェクション効率が増大
● プロモーターを選択可能:CMV / CBh / CAG
● 二本鎖または一本鎖切断
Cas9 (S. pyogenes) は二本鎖切断を行います。一方、Cas9N ニッカーゼ変異体は一本鎖切断を行います(特異性をより向上させるため
には、2 つのタンデム gRNA をもつ Nickase Ninja™ ベクターを利用 *1(15 ページ参照))。
Cas9 ヌクレアーゼは 20 塩基のガイド配列により誘導され、ほとんど全てのゲノム座位を切断可能です。これにより生じた染色体の破損
は、通常、非相同末端結合(NHEJ)により修復されるため、標的座位にわずかな欠損や挿入が生じます。一方、相同ドナー DNA を Cas9
とトランスフェクションした場合、相同組換え修復システムが刺激され標的配列を期待する変異配列と置換できます。
Cas9 には、DNA の非相補鎖を切断する RuvC 様ヌクレアーゼドメインと相補鎖 HNH ヌクレアーゼドメインという 2 つの触媒領域が
あります。DNA2.0 社の Cas9N またはニッカーゼは、Cas9 ヌクレアーゼの RuvC 様ヌクレアーゼドメインの D10A 点変異体です。
ガイド RNA は、ワトソン・クリック塩基対により Cas9 をゲノム標的に導くため、いかなるゲノム座位をも簡単に標的できます。
プロモータに関して特にご希望がない場合、または DNA2.0 社で検証済みの細胞(HeLa, HEK293, CHO および神経細胞)以外の細胞
をご利用の場合、3 種を全てお試し頂くことをお奨めします。
●
CRISPR/Cas9 参考文献
オフターゲット作用低減かつ挿入欠損効果増大に向けた Cas9 ニッカーゼ戦略に関する報告
Science 2013. 339(6121):819. Multiplex Genome Engineering Using CRISPR/Cas Systems.
● ゲノム編集用 CRISPR/Cas9 システムに関する報告
Science 2013. 339(6121):823. RNA-Guided Human Genome Engineering via Cas9.
●
COSMO BIO CO., LTD.
お問い合わせ先:TEL:03-5632-9610 FAX:03-5632-9619 E-mail: [email protected]
DNA2.0 社
WEBへどうぞ
DNA2.0 社
DNA
NickaseNinja™ All-in-one ベクター
記事ID:12575
高精度かつオフターゲット作用を低減
簡便:単一ベクターの形質転換
● ニッカーゼベクターへのタンデム gRNA クローニング
● 2A- 結合型レポーターより選択
DasherGFP、PaprikaRFP、レポータなし
● 特許出願中
●
●
DNA2.0 社では、単一 gRNA を E.coli 、酵母、および哺乳類細胞へ Electra™ クローニング *2 できるカタログ商品のニッカーゼベク
ターと、タンデムで2つの gRNA を搭載した単一ベクターをデザイン、合成、プラスミド構築を一貫してカスタムプラスミド構築サービスと
してご提供する NickaseNinja™ All-in-One ベクターの 2 種をご用意しています。
カタログ商品のニッカーゼベクターは、クローン作製にそのままご利用頂けます。Cas9 ヌクレアーゼは 20 塩基のガイド配列により誘導
され、ほとんど全てのゲノム座位を切断可能です。これにより生じた染色体の破損は、通常、非相同末端結合(NHEJ)により修復されるため、
標的座位にわずかな欠損や挿入が生じます。一方、相同ドナー DNA を Cas9 とトランスフェクションした場合、相同組換え修復システムが
刺激され標的配列を期待する変異配列と置換できます。
カスタムプラスミド構築サービスとしてご提供する NickaseNinja™ All-in-One ベクターは、2 つの U6 プロモーターを利用して単一
ニッカーゼベクターから 2 種類の gRNA を同時発現でき、複数のコンストラクトの同時導入の必要性を省いた DNA2.0 社独自のシステ
ムです。NickaseNinja™ ベクターには可視化用に蛍光レポータタンパク質が搭載されています。2 種の gRNA 搭載型 NickaseNinja™ ベ
クターをご用意しており、ご希望の 2 つの gRNA を発現するプラスミドを DNA2.0 社にて構築致します。NickaseNinja™ All-in-One
ベクターのカタログ販売は行っておりません。
DNA2.0 社
タンデムで 2 つの gRNA を搭載した単一ベクターによりトランスフェクション効率が増大!
NickaseNinja™ All-in-one ベクター
NickaseNinja™ ベクターの特長
【 DNA2.0 社 カスタムサービスお問い合わせ先 】
FAX : 03-5632-9614
TEL : 03-5632-9615
E-mail: [email protected]
*2 Electra Vactor System™
Electra Vector System™ は、DNA2.0 社独自の IP フリーカセットクローニングシステムです。細菌、哺乳動物、酵母用の発現ベク
ターへの簡便かつ傷跡の残らないクローニングをわずか 5 分で実現します。詳細はコスモ・バイオ WEB「DNA2.0(DNA)社 Electra
Vector System™」(記事 ID:11747)をご参照ください。
ゲノム
編集総説
CRISPRCas システム
概論
Applied
Biological
Materials 社
技術情報
DNA 2.0 社
技術情報
OriGene
Technologies 社
図 3. Cas9 ニッカーゼ挿入欠損頻度
DNA 社 All-in-One NickaseNinja™ ベ ク タ ー(タ ン
デ ム qRNA と2つ の U6 プ ロ モ ー タ を 利 用)
、DNA
社保有の 2 種のベクターを利用した場合および論文報
告データとの比較結果。
技術情報
Santa Cruz
Biotechnology 社
技術情報
図 2. ベクターマップ
GeneCopoeia 社
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15
DNA2.0 社
DNA2.0 社
NickaseNinja™ All-in-one ベクター
CRISPR gRNA デザインツール
WEB 上で使用できる無料の gRNA デザインツール!
DNA2.0 社の CRISPR gRNA Design Tool は、ご希望の標的
を効率よく変異しつつ、オフターゲット作用を低減できる gRNA
配列デザインが可能です。
DNA2.0 社 の WEB ペ ー ジ(www.dna20.com)よ り 無 料 で
ご利用いただくことができ、デモンストレーションの動画もご用意
しています。
ご希望の遺伝子または配列をご入力頂くと、デザインツールによ
りご入力配列内における Cas9 標的部位を全て同定します。
予想される特異性などを基準にした各標的部位に対する順位リス
トなどが結果として出力されます。本プログラムで使用するアルゴ
リズムは、NGG と NAG のスペーサー前隣接モチーフ(PAM)の
前方に位置する 12 塩基シード配列の出現率を考慮します。
DNA2.0 社 gRNA デザインツールの実績
野生型またはニッカーゼ Cas9 ベクター用に gRNA デザイン
NickaseNinja™ 用2つのタンデム gRNA デザインが簡便化
● 遺伝子名、座位、または特定標的配列に対するデザインが迅速
● ゲノム上の類似配列を避けたオフターゲット作用抑制
● お客様が選択した gRNA 配列を Electra™ CRISPR ベクター
へ組込むサービスもご提供、トランスフェクション可能な状態で納
品します。
●
●
図 4. DNA2.0 社 CRISPR gRNA デザインツール
本デザインツールでは、標的への特異性をもとに gRNA の順位に従って表示し、スプライ
スバリアントや重複遺伝子に対する各 gRNA の位置を表示します。文献報告では複数の
gRNA を試して効率のよいものを探すことが通例です。
CRISPR/Cas9 ゲノム編集 の検証
ゲノム
編集総説
CRISPRCas システム
概論
Applied
Biological
Materials 社
技術情報
DNA2.0 社の CRISPR ベクターの検証には HEK293 細胞と EMX-1 遺伝子を利用しました。Electra™ システムを用いて gRNA 配
列を pD13xx ベクターにクローンし、HEK293 細胞にトランスフェクションしました。トランスフェクション後、ゲノム DNA を抽出し該
当座位の配列決定を行いました。DNA2.0 社のベクターは、プロモーター配列により異なった挿入欠失(indel)頻度を示し、また同一座位を
標的とした既報に匹敵する挿入欠失頻度を示しました。
既報データ引用文献
Cell 2013. 155(2):479. Double nicking by RNA-guided CRISPR
Cas9 for enhanced genome editing specificity. Ran et al .
Science 2014. 343(6166):80. Genetic screens in human cells
using the CRISPR-Cas9 system. Wang et al .
NickaseNinja™ の検証
DNA 2.0 社
技術情報
OriGene
Technologies 社
技術情報
Santa Cruz
Biotechnology 社
技術情報
GeneCopoeia 社
16
図 5. インデル頻度はプロモータ強度を反映
gRNA 配 列 を pD1301、pD1311 お よ び pD1321
に Electra™ クローニングした。HEK293 細胞に 0.5
μ g のプラスミドをトランスフェクトした。トランス
フェク ションから 72 時間後、ゲノム DNA を抽出して
配列決定した。DNA 社ベクターは、使用したプロモータ
配列によって異なるインデル頻度を示した。
COSMO BIO CO., LTD.
図 6. pD1301 を用いた EMX-1 標的時の挿入欠失頻度
gRNA 配 列 を pD1301 に Electra™ ク ロ ー ニ ン グ し
た。HEK293 細胞に 0.5 μ g のプラスミドをトラン
スフェクションした。トランスフェクションから 72 時
間後、ゲノム DNA を抽出して EMX-1 遺伝子座の配列
決定を行った。DNA2.0 社ベクターは、同一座位を標的
した既報に比べ全般的に高い挿入欠失頻度を示した。
お問い合わせ先:TEL:03-5632-9610 FAX:03-5632-9619 E-mail: [email protected]
図 7. Cas9 ニッカーゼ挿入欠失頻度
DNA2.0 社 All-in-One NickaseNinja™ ベ ク タ ー(2
つ の U6 プ ロ モ ー タ に よ る タ ン デ ム gRNA を 利 用)
、
DNA2.0 社 従来型 2 ベクターシステムおよび既報デー
タの比較結果。
DNA2.0 社
クローニング情報
DNA2.0 社の pDAUGHTER-CRISPR ベクターに直接クローニングできるよう、Electra™ サイトを含む下記配列をプライマー末端に付
加することを推奨しています。
Forward primer:
5′-TACACGTACTTAGTCGCTGAAGCTCTTCTCCG....(gRNA)....-3′
Reverse primer:
5′-AGGTACGAACTCGATTGACGGCTCTTCTAAC....(gRNA Reverse Complement)....-3
DAUGHTER ベクターは、ボトムストランドに 5’-CGG-3’、トップストランドに 5’GTT-3’ のオーバーハングをもつ開環ベクターとして
ご提供します(図 9)。Electra™ 試薬ミックス存在下で、対象とする gRNA(または PCR 産物)と開環状 pDAUGHTERCRISPR ベク
ターと混合し、室温(25℃)で 5 ~ 20 分放置します。
* Electra™ クローニングではⅡ型酵素 Sap Ⅰを使用するため、ご利用になる gRNA に SapI 制限酵素認識部位が存在しないことをご確
認ください。
* DNA2.0 社の CRISPR/Cas9 ベクターは 5' 末端のリン酸基が脱リン酸化されており、ライゲーションの際、インサートもしくはベク
ターの 5' 末端にリン酸基を付加していただく必要がございます。
標的配列
DNA2.0 社
プライマーを直接アニーリングする方法と、推奨末端をもち,かつ 15-20bp のオーバーラップをもつプライマーをデザインして“ アニー
リングと伸長”を行う方法があります。PCR は 10 サイクル行うことを推奨しています。下記の Electra™ 反応には 1 μ l の PCR 反応
溶液をお使いください。
NickaseNinja™ All-in-one ベクター
gRNA の PCR
図 8. DAUGHTER ベクタークローニングサイト
ゲノム
編集総説
CRISPRCas システム
概論
Applied
Biological
Materials 社
技術情報
図9. ベクターマップ
クローニング操作手順
1.
2.
3.
4.
5.
DNA 2.0 社
下表に示した構成成分を1つの 1.5mL チューブに混合する。
* Daughter ベクターは、DNA2.0 社より開環状で提供されます。
5 ~ 20 分間室温放置
2 μ L の反応溶液をコンピテントセルに形質転換
適切な抗生物質を含む LB プレートに播種
37℃で一晩培養。形質転換体を選択する。
構成成分
技術情報
OriGene
Technologies 社
技術情報
容量(μl)
MOTHER DNA/Positive Control* (20ng)
1
DAUGHTER Vector (20ng)
1
Electra™ Buffer Mix* (1X)
2
Electra™ Enzyme Mix* (1X)
1
Sterile ddH2O
15
全容量
20
Santa Cruz
Biotechnology 社
技術情報
GeneCopoeia 社
* Daughter ベクターは、DNA2.0 社より開環状で提供されます。
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COSMO BIO CO., LTD.
17
DNA2.0 社
■ Cas9 Electra™ Daughters
NickaseNinja™ All-in-one ベクター
品名
DNA2.0 社
メーカー略号
品番
包装
CMV-Cas9-ElecD vector
DNA
PD1301
10 RXN
希望販売価格
CBh-Cas9-ElecD vector
DNA
PD1311
10 RXN
¥48,000
CMV-Cas9-2A-GFP-ElecD vector
DNA
PD1301-AD
10 RXN
¥48,000
¥48,000
CBh-Cas9-2A-GFP-ElecD vector
DNA
PD1311-AD
10 RXN
¥48,000
CAG-Cas9-2A-GFP-ElecD vector
DNA
PD1321-AD
10 RXN
¥48,000
CMV-Cas9-2A-RFP-ElecD vector
DNA
PD1301-AP
10 RXN
¥48,000
CBh-Cas9-2A-RFP-ElecD vector
DNA
PD1311-AP
10 RXN
¥48,000
CAG-Cas9-2A-RFP-ElecD vector
DNA
PD1321-AP
10 RXN
¥48,000
CAG-Cas9-2A-Puro Cas9-ElecD vector
DNA
PD1321-APURO
10 RXN
¥48,000
■ Cas9 Nickase Electra Daughters
メーカー略号
品番
包装
CMV-Cas9N-ElecD vector
品名
DNA
PD1401
10 RXN
希望販売価格
CBh-Cas9N-ElecD vector
DNA
PD1411
10 RXN
¥48,000
CMV-Cas9N-2A-GFP-ElecD vector
DNA
PD1401-AD
10 RXN
¥48,000
¥48,000
CBh-Cas9N-2A-GFP-ElecD vector
DNA
PD1411-AD
10 RXN
¥48,000
CAG-Cas9N-2A-GFP-ElecD vector
DNA
PD1421-AD
10 RXN
¥48,000
CMV-Cas9N-2A-RFP-ElecD vector
DNA
PD1401-AP
10 RXN
¥48,000
CBh-Cas9N-2A-RFP-ElecD vector
DNA
PD1411-AP
10 RXN
¥48,000
CAG-Cas9N-2A-RFP-ElecD vector
DNA
PD1421-AP
10 RXN
¥48,000
All-in-One NickaseNinja™ カスタムプラスミド構築サービス
*1: 2 つの gRNA をもつ NickaseNinja™ ベクターは、DNA2.0 社のカスタムプラスミド構築サービスとしてご提供しています。本
サービスでは、DNA2.0 社ニッカーゼベクターに対するデザイン、合成、プラスミド構築を一貫して承っておりますので、カタログ商品
としてはご提供していません。NickaseNinja™ All-in-One ベクターによりお客様ご希望の gRNA をタンデム発現できます。
【 DNA2.0 社 カスタムサービスお問い合わせ先 】
FAX : 03-5632-9614
TEL : 03-5632-9615
E-mail: [email protected]
ゲノム
編集総説
CRISPRCas システム
概論
Applied
Biological
Materials 社
技術情報
DNA 2.0 社
技術情報
OriGene
Technologies 社
技術情報
Santa Cruz
Biotechnology 社
技術情報
GeneCopoeia 社
18
COSMO BIO CO., LTD.
お問い合わせ先:TEL:03-5632-9610 FAX:03-5632-9619 E-mail: [email protected]
■ 技術情報
DNA2.0 社
CRISPR/Cas9 オールインワンベクター FAQ
A
CRISPR Cas9 技術の利用により、挿入欠失変異を介し対象ゲノムの特定位置の遺伝子にノックインし、遺伝子発現のノックダウンが
できます。
Q
【02】CRISPR/Cas9 技術を自分が対象とする宿主で利用できますか。
A
DNA2.0 社では哺乳動物と酵母システムを対象とした商品を上市しています。現在、大腸菌をはじめとする複数の宿主システムでの開
発を、主に共同研究を通じて進めています。お客様のシステムで利用可能な CRISPR/Cas9 の開発プロジェクトも実施致します。
ご希望がございましたら、コスモ・バイオ営業部(欄外参照)までお問合せください。
Q
【03】NickaseNinja™ とは何ですか。
A
NickaseNinja™ は全てを持ち合わせたベクターで、Cas9 のニッカーゼ変異体をタンパク質の機能に必要な 2 種の gRNAs ととも
に発現します。
Q
【04】NickaseNinja™ の注文方法を教えてください。
A
現時点では、NickaseNinja™ は DNA2.0 社のクローニングサービスとしてご希望の gRNAs を DNA2.0 社で組込済のコンスト
ラクトとしてのみご提供しており、空ベクターののご提供はしておりません。お客様のカスタムデザイン gRNAs をベクターにクロー
ン致します。
本サービスにつきましては、コスモ・バイオ 技術サービス部 創薬グループへお問合せください。
【 DNA2.0 社 カスタムサービスお問い合わせ先 】
FAX : 03-5632-9614
TEL : 03-5632-9615
E-mail: [email protected]
Q
【05】DNA2.0 gRNA デザインツールの使い方を教えてください。
A
ご希望の遺伝子または配列情報をご入力頂くと、デザインツールが入力配列内の全ての Cas9 標的部位を同定します。結果には予測
される特異性を基にした標的部位の順位リストがついています。本プログラムで使用しているアルゴリズムは NGG と NAG スペー
サー後隣接モチーフ(PAM)の前に位置する 12 塩基のシード配列の出現率に基づいています。コスモ・バイオ WEB(記事 ID:
12575)に操作に関するデモンストレーション動画がございます。ご参照ください。
DNA2.0 社
【01】CRISPR/Cas9 技術でどんなことができますか。
CRISPR/Cas9 オールインワンベクター
Q
ゲノム
編集総説
Q
【06】挿入欠失頻度を教えてください。
A
CRISPRCas システム
概論
挿入欠失頻度は、標的遺伝子配列の挿入と欠失の比率で計測されます。挿入欠失は標的部位における短鎖の挿入または欠失で、宿主細
胞における Cas9/gRNA による切断とその後の非相同末端結合(NHEJ)により生ずると考えられます。NHEJ は小さな変異(挿
入または欠失;挿入欠失)を導入するため、Cas9/gRNA による切断が回避されます。DNA2.0 社では、Cas9/gRNA に曝露後、
12-24 コロニーを用いて対象領域を PCR し、切断部位を含めて配列決定します。その後、無修正の野生型配列(野生型)を対照とし
て、切断部位における変異率または挿入 / 欠失を下記の通り算出します。
挿入欠失頻度 = 挿入欠失/野生型 x 100 [ 百分率として ]
Applied
Biological
Materials 社
技術情報
Q
【07】通常どのような挿入欠失がみられますか。
DNA 2.0 社
A
最も一般的なのは 1 塩基欠失です。短鎖挿入をはじめ 1-10 塩基の欠失も経験しています。論文等では 1-10 塩基の挿入や欠失が報
告されています。
技術情報
OriGene
Technologies 社
Q
【08】新規 DNA 配列の最大挿入サイズを教えてください。
A
宿主により異なります。特定の宿主における最大挿入サイズは変化しない(その宿主に関する文献情報に準ずる)と思われます。
CRISPR ではこれらの現象を効率的に行うことができるため、選択マーカーを利用しなくても遂行可能です。本プロセスは現在より効
率的になっており、最大挿入配列を少し大きくできるかもしれません。ただし、ご利用の宿主においてご確認頂く必要がございます。
Q
【09】陽性細胞の選択方法を教えてください。
A
CRISPR の効率は非常に高いため、選択を行う必要がありません。DNA2.0 社では通常 12-24 クローンを選択して増殖し、配列決
定により選別します。通常、最低 1 つから 10 のクローンが遺伝子ノックアウトを導くのに適切なフレームシフト変異を含んでいま
す。抗生物質マーカーをご利用頂くことも可能ですが、CRISPR 効率は非常に高く、マーカーを必要としないゲノム編集が一般的かつ
通常期待される手法です。
お問い合わせ先:TEL:03-5632-9610 FAX:03-5632-9619 E-mail: [email protected]
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Santa Cruz
Biotechnology 社
技術情報
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OriGene Technologies 社
WEBへどうぞ
OriGene Technologies 社
OriGene Technologies 社
Cas9- ゲノム編集用ガイドベクター
ORG
ゲノム
編集総説
Cas9- ゲノム編集用ガイドベクター
CRISPR/Cas9 を用いてゲノムを簡単編集
背景
ゲノム編集の最新ツールである CRISPR/Cas9 は、特異的なゲ
ノムの破壊や置換を可能にするフレキシブルかつシンプルなシステ
ムで、高い特異性と低毒性という特徴を持ちます。CRISPR/Cas9
ゲノム編集システムには、Cas9 タンパク質と、ヒト U6 ポリメ
ラーゼⅢプロモーターで発現されたガイド RNA ベクターの共発現
が必要になります。3' 末端にプロトスペーサー近接モチーフ(PAM
- 配列 NGG)が存在すると、Cas9 が DNA 二本鎖を解離させ、
ガイド RNA によってターゲット配列を認識して両方の鎖を切断
します。レスキュードナーベクター中のブルーヘロン(OriGene
Technologie 社の受託部門)にて合成された機能性カセットは、
巻き戻された DNA に挿入することが可能です。このようにして修
復されたゲノムにより、ご希望の配列(タグつきあるいはタグなし)
を発現します。
使用目的
pCas- ガイドベクターは、ゲノム編集のためのガイド RNA を
クローニングするために設計されています。ベクターには、CMV駆動のコドン最適化 Cas9 もコードされています。適切なドナー
DNA と共発現されると、ターゲットゲノム編集が活性化されます。
E. coli の形質転換体の選択のための、アンピシリン耐性遺伝子も
保持しています。OriGene Technologies 社では、gRNA および
Cas9 を共発現するスタンダードな All-in-one タイプベクターの
ほか、さらに GFP モニタリング、レンチウイルス骨格ベクターお
よび遺伝子ノックアウトモデル(動物)の作製に有用な T7 プロモー
ターをもつベクターもラインアップしています。プレカットタイプ
(線状)と BamH I/BsmB I サイトを持つ環状プラスミドよりお選
び頂くことができ、野生型の Cas9 を発現するものとオフターゲッ
ト作用を低減するニッカーゼ型を発現するものもご選択頂けます。
図 1 CRISPR/Cas9 システムの概要
構成内容
CRISPRCas システム
概論
Applied
Biological
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技術情報
DNA 2.0 社
技術情報
OriGene
Technologies 社
技術情報
Santa Cruz
Biotechnology 社
技術情報
GeneCopoeia 社
20
pCas- ガイドクローニングキット(品番:GE100001)
● precut pCas-Guide プラスミド DNA
● CF3 シークエンスプライマー(品番:GE100008)
● アニーリングバッファー(品番:GE100007)
pCas- ガイドプラスミド(品番:GE100002)
● pCas-Guide プラスミド DNA
● CF3 シークエンスプライマー(品番:GE100008)
図 2 pCas- ガイドベクターのベクターマップ
左:品番:GE100001(precut)
、右:品番:GE100002
CRISPR/Cas9 システムを用いたゲノム編集
Cas9 ベースのゲノム編集は、そのシンプルさと高い切断効率か
ら、標的ゲノム操作のためのポピュラーなツールになりつつありま
す。このシステムには、機能性 cas9 タンパク質と、必要な部位で
二本鎖を効率的に切断するためのガイド RNA が必要になります。
OriGene Technologies 社 は、ガ イ ド RNA 及 び Cas9 の 両 方
を含む二重機能ベクター、pCas ガイドシステムを開発しました。
ドナーベクター構築用のドナーカセットのセットもご用意してお
り ま す(Luciferase-Loxp-Puro-Loxp、tGFP-Loxp-Puro-Loxp、
tRFP-Loxp-BSD-Loxp があります)。
ドナーベクター構築サービスは、コスモ・バイオ技術サービス部テ
クニカルサービスグループまでお問い合せください。
【 お問い合わせ先 】
FAX : 03-5632-9614
TEL : 03-5632-9615
E-mail: [email protected]
COSMO BIO CO., LTD.
図 3 CRISPR/Cas9 システムを用いたゲノム編集のフローチャート
お問い合わせ先:TEL:03-5632-9610 FAX:03-5632-9619 E-mail: [email protected]
記事ID:12003
OriGene Technologies 社
品名
包装
希望販売価格
GE100001
1 KIT (10 RXN)
¥109,000
pCas-Guide
ORG
GE100002
1 KIT (10 UG)
¥124,000
pCas-Guide-EF1a-GFP
ORG
GE100018
1 KIT (10 UG)
¥124,000
pCas-Guide-EF1a-CD4
ORG
GE100022
1 KIT (10 UG)
¥124,000
pT7-Guide-IVT
ORG
GE100025
1 KIT (10 UG)
¥88,000
pT7-Cas9
ORG
GE100014
1 KIT
pLenti-Cas-Guide Cloning Kit
ORG
GE100009
1 KIT (10 RXN)
¥109,000
pLenti-Cas-Guide
ORG
GE100010
1 KIT (10 UG)
¥124,000
pCas-Guide-Nickase
ORG
GE100019
1 KIT (10 UG)
¥124,000
pT7-Cas9-Nickase
ORG
GE100020
1 KIT (10 UG)
¥88,000
pCMV6-Entry-Cre
ORG
GE100017
1 KIT
¥99,000
pCas-Scramble
ORG
GE100003
10 UG
¥97,000
Annealing Buffer
ORG
GE100007
0.2 ML
¥20,000
pCas-Scramble-EF1a-GFP
ORG
GE100021
10 UG
¥97,000
CF3 Primer
ORG
GE100008
100 PMOL
¥14,000
WEBへどうぞ
OriGene Technologies 社
ORG
ゲノム編集ノックアウトキット
■ CRISPR を用いたゲノム編集ノックアウトキット
構成内容
標的遺伝子特異的 gRNA ベクター 1(pCas-Guide vector)
● 標的遺伝子特異的 gRNA ベクター 2(pCas-Guide vector)
● ドナーベクター(GFP-Puro 挿入用)
● スクランブルコントロールベクター(品番:GE100003)
¥88,000
記事ID:13159
■ 商品検索方法
1
●
コスモ・バイオのトップページより「詳細検索」をクリッ
クしてください。
OriGene Technologies 社
品番
ORG
ゲノム編集ノックアウトキット
メーカー略号
pCas-Guide Cloning Kit
ゲノム
編集総説
2
メーカー略号に「ORG]、品番に KN*、キーワードにご希
望の遺伝子名を入力し、検索してください。
CRISPRCas システム
概論
Applied
Biological
Materials 社
技術情報
DNA 2.0 社
技術情報
OriGene
Technologies 社
参考文献
1. Multiplex Genome Engineering Using CRISPR/Cas
Systems. Cong L, Ran FA, Cox D, Lin S, Barretto
R, Habib N, Hsu PD, Wu X, Jiang W, Marraffini LA,
Zhang F.
Science 2013 Feb 15;339(6121):819-23
技術情報
3
検索結果が表示されますので、内容をご確認いただき品番
を代理店様へご指定してご注文ください。
技術情報
2. RNA-Guided Human Genome Engineering via Cas9.
Mali P, Yang L, Esvelt KM, Aach J, Guell M, DiCarlo
JE, Norville JE, Church GM
Science 2013 Feb 15;339(6121):823-6
お問い合わせ先:TEL:03-5632-9610 FAX:03-5632-9619 E-mail: [email protected]
Santa Cruz
Biotechnology 社
GeneCopoeia 社
COSMO BIO CO., LTD.
21
■ 技術情報
OriGene Technologies 社
OriGene Technologies 社
Cas9- ゲノム編集用ガイドベクター
CRISPR/Cas9 ゲノム編集用ガイドベクター FAQ
ゲノム
編集総説
CRISPRCas システム
概論
Applied
Biological
Materials 社
技術情報
DNA 2.0 社
技術情報
Q
【01】NGG PAM 配列には 20bp 標的特異的配列が必要ですが、
NGG は必ず 20bp 配列の 3' 末端直後に配置する必要がありますか。
A
はい。NGG は 20bp 標的特異的配列の 3' 末端直後に配置します。
Q
【02】20bp 標的特異的配列のデザイン方法を教えてください。
A
20bp 標的特異的配列は NGG(PAM)の前に来ます。20bp 標的配列のシード領域(12bp PAM 近位)を BLAST にかけ、この
配列がゲノムに対してユニークであり、特異性を示すことを確認してください。シード領域(5’-NNNNNNNNNNNN-NGG-3’)は対象
とするゲノムに対して特異的です。シード領域に続いて NGG や NAG をもつ配列であっても、シード領域に 3bp 以下のミスマッチ
をもつ配列は使用できません。
Q
【03】ゲノム編集プロジェクトを行う場合、いくつくらいの標的 RNA 配列を使用するべきですか。
A
gRNA の性質上、予測不可能であることを考慮し、少なくとも 1 つのターゲティング配列が機能することを目指して 2 つ以上の
gRNA ターゲティング配列をデザインすることをお勧めします。
Q
【04】ドナー配列が蛍光タンパク質マーカーや抗生物質耐性マーカーを持たない場合の
ゲノム編集評価方法を教えてください。
A
もし標的遺伝子が内在性タンパク質と区別可能なタンパク質をコードする場合、ウェスタンブロット法が利用できます。または、プライ
マーの一方をドナー配列内に設計し他方のプライマーをドナー配列の下流に設計して「ジャンクション PCR」を行い、ドナー配列を検
出することもできます。
Q
【05】pCas9 システムではオフターゲット作用に関してどのように対処していますか。
A
標的配列をデザインする際、配列を BLAST にかけて PAM 近位に 3 塩基以下のミスマッチを含む配列が存在しないことを確認して
います。他の配列は NGG や NAG をもたないことを確認しています。
Q
【06】CF3 シークエンシングプライマー配列を教えてください。
A
5’-ACGATACAAGGCTGTTAGAGAG-3’
Q
【07】pCas-Guide システムの検証データを教えてください。
A
検証データは 下記 URL よりダウンロード可能です。ご参照ください。
http://www.origene.com/assets/documents/cDNA/pCas-Guide_System_Validation.pdf
Q
【08】pCas-Scramble のスクランブル配列を教えてください。
A
5’ GCACTACCAGAGCTAACTCA 3’
Q
【09】gRNA クローニングサービスやドナーベクターサービスも行っていますか。
A
はい、行っています。詳細につきましては、コスモ・バイオ技術サービス部テクニカルサービスグループまでお問い合せください。
【 お問い合わせ先 】
OriGene
Technologies 社
TEL:03-5632-9615 FAX:03-5632-9614 E-mail:[email protected]
技術情報
Santa Cruz
Biotechnology 社
技術情報
GeneCopoeia 社
22
Q
【10】pLenti vector に関する安全性での問題はありませんか。
A
pLenti vector は第 3 世代のレンチウイルスベクターであり、双方の LTR 領域が切断された 現時点で最も安全だと考えられている
レンチウイルスベクターです。
ただし、pLenti vector をご利用の際には、事前にご所属の機関の生物学的安全性部門にお問い合わせ頂き、許可を得ると同時に機関
特定の指導を得てください。レンチウイルスの取扱いは、全て BL2/(+) 条件下で行ってください。全ての汚染除去ステップにおいて
70% エタノール/ 1% SDS をご利用ください。レンチウイルス調製、感染細胞の取扱い、トランスフェクション試薬とレンチウイル
ス DNA の混合物の取扱いといった全行程において、手袋をご使用ください。
* 日本国内では、P2 レベルの機関承認実験です。
COSMO BIO CO., LTD.
お問い合わせ先:TEL:03-5632-9610 FAX:03-5632-9619 E-mail: [email protected]
OriGene Technologies 社
A
第 3 世代のレンチウイルスベクターは第 2 世代ベクターより安全面で優れています。第 3 世代のパッケージングシステムでは gag
と pol をひとつのベクターから、rev を他のベクターから発現させます。第 3 世代のパッケージングシステムでは tat(転写のトラ
ンス活性化因子)を発現させません。
Q
【12】レンチウイルス産生にはどの細胞株を使用すればよいですか。
A
レンチウイルス産生には通常 HEK293T 細胞が 使用されます。コスモ・バイオではレンチウイルス粒子産生用の種々の HEK293T
細胞株 を取り扱っています。
メーカー略号
品番
包装
希望販売価格
293T cell line
品名
APB
LV010
1*107 CELLS
¥29,000
293LTV Cell Line
CBL
LTV-100
1 VIAL
¥81,000
293Ta Lentiviral packaging cell line: 1.5 x 106 cells
GCP
CLV-PK01
1 UNIT (1.5 x 106 cells)
ご照会
Q
【13】ウイルス粒子を産生させず、pLenti ベクターを直接トランスフェクションできますか。
A
OriGene Technologies 社の pLenti ベクターは導入遺伝子発現を目的とした一過性トランスフェクションにも使用できます。ただ
し、一般にはトランスフェクション効率が低いことからタンパク質産生量が低くなります。
Q
【14】レンチウイルスとレトロウイルスの違いはなんですか。
A
レンチウイルスはレトロウイルスの亜型です。レンチウイルスと標準的なレトロウイルスとの主な違いを特に実験的な観点からいうと、
レンチウイルスは非分化細胞と活発な分裂細胞の何れにも感染可能であるのに対し、標準型のレトロウイルスは有糸分裂細胞にのみ感
染可能です。レンチウイルスと標準型レトロウイルスの何れも gag, pol, env 遺伝子をパッケージングに利用します。ただし、これらの
タンパク質はレトロウイルスとレンチウイルスで異なるアイソソームを使用するため、異なるパッケージングベクターを使用した場合、
効率的なパッケージングが行われない可能性があります。
Q
【15】pLenti ベクターに第 2 世代のパッケージングシステムを使用できますか?
A
第 2 世代のパッケージングシステムも理論的には OriGene Technologies 社の第3世代 pLenti ベクターに使用できるはずです
が、実験的検証は行っていません。pLenti-vector には、OriGene Technologies 社の 第 3 世代パッケージングキット(品番:
TR30022)をご利用ください。
品名
Lenti-vpak Packaging Kit
メーカー略号
品番
包装
希望販売価格
ORG
TR30022
10 RXN
¥99,000
Q
【16】pT7-Guide ベクターにクローンされている標的配列の配列決定方法を教えてください。
A
M13 forward primer: 5’ CGCCAGGGTTTTCCCAGTCACGAC 3’ をご利用ください。
OriGene Technologies 社
【11】第 3 世代のレンチウイルスベクターの特徴を教えてください。
Cas9- ゲノム編集用ガイドベクター
Q
ゲノム
編集総説
CRISPRCas システム
概論
Applied
Biological
Materials 社
技術情報
DNA 2.0 社
技術情報
OriGene
Technologies 社
技術情報
Santa Cruz
Biotechnology 社
技術情報
GeneCopoeia 社
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23
Santa Cruz Biotechnology 社
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Santa Cruz Biotechnology 社
CRISPR/Cas9 ゲノム編集用ツール
Santa Cruz Biotechnology 社
CRISPR/Cas9 ゲノム編集用ツール
SCB
記事ID:14017
ノックアウトプラスミド、HDR プラスミド、Cre ベクターで
ゲノム編集をトータルサポート!
背景
CRISPR/Cas システムとは
CRISPR/Cas システムは、古細菌や細菌において外来性遺伝物質の崩壊に利用される適応型免疫防御機序です。これらの微生物では、バク
テリオファージ由来の外来性遺伝物質は獲得性であり、CRISPR 座位に組み込まれます(1, 2)。スペーサーと呼ばれるこの新規物質は、将来的
なバクテリオファージ感染耐性に利用される配列特異的断片を生成します。これらの配列特異的断片は短鎖 CRISPR RNAs(crRNAs)とし
て翻訳され、CRISPR 座位にコードされた CRISPR 関連(Cas)タンパク質のヌクレアーゼ活性を介して相補配列をもつ侵入 DNA 断片
を方向づけるガイドとして機能します(1, 2)。Ⅱ型 CRISPR システムの Cas9 ヌクレアーゼは RNA 結合ドメイン、αヘリックス認識ロー
ブ(REC)、DNA 切断用 RuvC と HNH を含むヌクレアーゼローブ、およびプロトスペーサー隣接モチーフ(PAM)相互作用部位を有し
ます(1, 2)。crRNA は REC ローブ内の架橋ヘリックスに結合して Cas9 ヌクレアーゼと複合体を形成し、crRNA 骨格をもつ複数の塩橋を
形成します(1, 2, 3)。
crRNA が Cas9 に結合すると Cas9 ヌクレアーゼの立体構造が変化し、DNA 結合用のチャネルが作られます(1, 2, 3)。Cas9/crRNA
複合体は DNA 上を走査して PAM(5’-NGG)部位を探し(4, 5, 6)、これを認識すると DNA の巻き戻しが誘導され、crRNA が PAM 部位
に隣接した相補鎖 DNA を調べます。Cas9 が crRNA に相補な DNA 配列に隣接した PAM 部位に結合すると、REC ローブ内の架橋ヘ
リックスにより標的 DNA とともに RNA-DNA へテロ二重鎖が形成されます(3, 4, 7)。PAM 部位認識には核酸分解性 HNH や RuvC ドメ
インの活性化が関与し、これにより標的 DNA に二本鎖切断(DSBs)が生じて DNA 崩壊へと誘導します(1, 2, 5, 8)。もし、crRNA が相補的
でない場合、Cas9 が放出され他の PAM 部位を検索します(7)。DNA 内の標的ゲノム鎖切断は非相同末端結合(NHEJ)修復経路により修
復されますが、これにより挿入や欠失が導入されエラーを生じます。あるいは、相同組換え(HDR)経路を介して修復されますが、この場合、
ゲノム内の特異的部位への特定マーカー組み換えに利用することができます(2, 9, 10)。この CRISPR/Cas9 メカニズムは、哺乳動物細胞を含
む種々のシステムにおけるゲノム工学に適用可能です。
DSBs 導入によるゲノム編集は、DNA 配列を認識するメガヌクレアーゼ、ジンクフィンガーヌクレアーゼ(ZNF)、または TAL エフェ
クターヌクレアーゼ(TALEN)により遂行されますが、これらの方法には各々の制限があります。メガヌクレアーゼを使用する場合、ヌク
レアーゼと DNA 間の部位特異的認識を明瞭に示すことが困難であり (2)、ZNF や TALEN では 3 塩基未満の DNA 配列を設計し、認識
することが困難であることが判明しています (2)。crRNAs 様に作用する単一ガイド RNA(sgRNAs)は簡単にデザインすることができ、
Cas9 ヌクレアーゼとともに同一ベクター内より発現させることで、特定の DNA 部位を標的としたゲノム編集を遂行することができます。
CRISPR/Cas9 システムは短鎖ヘアピン RNAs に比べて感度が高く、スクリーニング目的ではより高い効果が得られます。
ゲノム
編集総説
gRNA
Plasmid
2
CRISPRCas システム
概論
gRNA
Plasmid
1
Applied
Biological
Materials 社
gRNA
Plasmid
3
技術情報
DNA 2.0 社
Targeted DNA
細胞へ
トランスフェクション
技術情報
Cas9リボヌクレアーゼと
gRNAの転写
OriGene
Technologies 社
Cas9 Nuclease
Target DNA
Cut
Site
技術情報
PAM
Site
NGG
NCC
Santa Cruz
Biotechnology 社
20 nt sequence
技術情報
Cas9/gRNA 複合体がゲノム DNA の PAM 部位隣接標的座位に結合
3 種の gRNA プラスミドが標的とする 3 つの特異的部位において Cas9 が遺伝子の 5' エキソンを切断
● 野生型 Cas9 ヌクレアーゼ
● 標的遺伝子の崩壊
●
●
GeneCopoeia 社
24
COSMO BIO CO., LTD.
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Santa Cruz Biotechnology 社
CRISPR/Cas9 ノックアウトプラスミド
●
U6プロモータ:
gRNA発現を駆動
20 nt
sequenc e
U6
C Bh
GFP
CRISPR/Cas9
Knockout Plasmid
term:終末シグナル
CBh(ニワトリβアクチン混成体)
プロモータ:
Cas9発現を駆動
2A
2Aペプチド:
同一のCBhプロモータよりCas9と
GFPの双方の産生を可能とする
rm
Te
緑色蛍光タンパク質:
選択マーカー
gRNA足場:
Cas9の標的DNA結合を介助
g
sc a RNA
f fo
ld
N LS
NLS:核局在化シグナル
C as 9
NL
S
NLS:核局在化シグナル
Santa Cruz Biotechnology 社
20塩基非翻訳RNA配列(guide RNA):
Cas9をゲノムDNA内の特異的標的部位に導く
CRISPR/Cas9 ゲノム編集用ツール
20 μ g 包装:最大 20 回のトランスフェクションが可能
3 種の gRNA をプール:CRISPR/Cas9 ノックアウト(KO)プラスミドは、最大のノックアウト効率が得られるようデザインされた、
Cas9 ヌクレアーゼと標的特異的 20 塩基ガイド RNA(gRNA)をコードする 3 種のプラスミドのプール
● 優れた gRNA 配列:gRNA 配列は GeCKO(v2)ライブラリー由来であり、Cas9 タンパク質を配向してゲノム DNA 内に部位特異的
二本鎖切断(DSBs)を誘発する(11)。
● ヒトおよびマウス遺伝子を網羅
● Ready-to-use:トランスフェクションに直ちに利用できる精製済プラスミド DNA ( 非ウイルスベクター ) をご提供
●
SpCas9 リボヌクレアーゼ
HDR プラスミド
HDR プラスミドは、二本鎖切断(DSBs)のための特異的 DNA
修復テンプレートをご提供する製品です。
CRISPR/Cas9 ノックアウト (KO) プラスミドと同時導入する
と、HDR プラスミドは Cas9 誘導性 DNA 切断が生ずる部位に
細胞選択用ピューロマイシン耐性遺伝子を組み込みます。
ゲノム
編集総説
CRISPRCas システム
概論
20 μ g 包装:最大 20 回のトランスフェクションが可能
標的特異的 HDR プラスミドは、CRISPR/Cas9 KO プラスミ
ドにより生じた切断部位に相当する各相同組換え修復(HDR)テ
ンプレートから構成
● 各 HDR テンプレートは、相当する Cas9 誘導型二本鎖 DNA
切断部位周辺のゲノム DNA に特異的結合するよう設計された 2
つの相同性アーム (800bp) を含む
● 各 HDR プラスミドはノックアウト(KO)細胞の選択を可能と
するピューロマイシン耐性遺伝子を挿入
● 各ピューロマイシン耐性遺伝子には 2 つの LoxP 部位が隣接
し、Cre ベクターを用いた切除が可能
● 各 HDR プラスミドは RFP によりトランスフェクションの視覚
化が可能
● Ready-to-use:トランスフェクションに直ちに利用できる精製済
プラスミド DNA ( 非ウイルスベクター ) をご提供
●
●
Applied
Biological
Materials 社
技術情報
DNA 2.0 社
技術情報
OriGene
Technologies 社
技術情報
Santa Cruz
Biotechnology 社
技術情報
GeneCopoeia 社
お問い合わせ先:TEL:03-5632-9610 FAX:03-5632-9619 E-mail: [email protected]
COSMO BIO CO., LTD.
25
Santa Cruz Biotechnology 社
Santa Cruz Biotechnology 社
Cre ベ ク タ ー は、2 つ の LoxP 部 位 間 の 部 位 特 異 的 DNA 組
換えを触媒するバクテリオファージ p1 酵素である Cre リコン
ビナーゼを発現します。CRISPR/Cas9 ノックアウトプラスミド
と HDR プラスミドを同時にトランスフェクトした場合、相同組換
え修復(HDR)の際に挿入された選択マーカーを利用して編集され
た DNA をもつ細胞を選択することができます。その後、選択細胞
に Cre ベクターをトランスフェクションし、HDR の際に挿入され
たピューロマイシン耐性遺伝子を切除することができます。
CMV プロモータ:
Cre 酵素発現を駆動
CM
V
Cre VECTOR
20 μ g 包装:最大 20 回のトランスフェクションが可能
CRISPR/Cas9 ノックアウト (KO) プラスミドおよび HDR プ
ラスミドによる編集が完了した選択細胞における DNA 修復に使
用
● CMV プロモーターにより Cre リコンビナーゼを発現
● Ready-to-use:トランスフェクションに直ちに利用できる精製済
プラスミド DNA ( 非ウイルスベクター ) をご提供
●
Cre
相同組換え修復(HDR)に
よって挿入されたDNA 配列に
隣接する2 つのLoxP 部位に
Cre が結合して切断する
メーカー略号
品番
包装
希望販売価格
SCB
SC-418923
20 UG
ご照会
1
Santa Cruz Biotechnology 社の WEB サイト(www.scbt.com)へアクセスし、
検索ウィンドウに遺伝子名を入力して検索してください。
2
画面をスクロールすると、抗体製品の下に CRISPR/Cas9 製品が掲載されています。
品名をクリックし、製品ページをご確認ください。
ゲノム
編集総説
Applied
Biological
Materials 社
技術情報
DNA 2.0 社
データシートおよびプロトコールは
こちらよりご覧いただけます。
技術情報
OriGene
Technologies 社
技術情報
Santa Cruz
Biotechnology 社
技術情報
3
26
ゲノムDNA はDNA リガーゼにより連結され、
ゲノムDNA 上には1 つのLoxP 部位のみ
残される
2 つのLoxP 部位に挟まれた
DNA 断片が環状DNA として
切除される
品名
GeneCopoeia 社
Creリコンビナーゼ
●
Cre Vector
CRISPRCas システム
概論
Cr
e
CRISPR/Cas9 ゲノム編集用ツール
Cre vector
品番、品名、数量を指定し、ご利用の代理店様へご注文ください。
希望販売価格:お問合わせ下さい。
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Santa Cruz Biotechnology 社
■ 関連製品
品名
品番
包装
希望販売価格
SCB
SC-418922
20 UG
ご照会
UltraCruz Transfection Reagent
SCB
SC-395739
0.2 ML
ご照会
Plasmid Transfection Medium
SCB
SC-108062
20 ML
ご照会
Puromycin dihydrochloride
SCB
SC-108071
25 MG
ご照会
1. Van der Oost J., et al. 2014. Unraveling the Structural and Mechanistic Basis of CRISPR-Cas Systems. Nat. Rev.
Microbiol . (7):479-92. PMID 24909109.
2. Hsu, P., et al. 2014. Development and Applications of CRISPR-Cas9 for Genome Editing. Cell . 157(6):1262-78.
PMID 24906146.
3. Nishimasu, H., et al. 2014. Crystal Structure of Cas9 in Complex with Guide RNA and Target DNA. Cell .
156(5):935-49. PMID 24529477.
4. Deltcheva, E., et al. 2011. CRISPR RNA Maturation by Trans-Encoded Small RNA and Host Factor RNASE III.
Nature . 471: 602-607. PMID 21455174.
5. Jinek, M., et al. 2012. A Programmable Dual-RNA Guided DNA Endonuclease in Adaptive Immunity. Science .
337(6096):816-21. PMID 22745249.
6. Deveau, H., et al. 2010. CRISPR/Cas System and its Role in Phage-Bacteria Interaction. Annu. Rev. Microbiol . 64:
475-493. PMID 20528693.
Santa Cruz Biotechnology 社
参考文献
CRISPR/Cas9 ゲノム編集用ツール
メーカー略号
Control CRISPR/Cas9 Plasmid
7. Sternberger, SH., et al. 2014. DNA Interrogation by the CRISPR RNA-guided Endonuclease Cas9. Nature .
507(7490):62-7. PMID 24476820.
8. Gasuinas, G., et al. 2012. Cas9-crRNA Ribonucleoprotein Complex Mediates Specific DNA Cleavage for Adaptive
Immunity in Bacteria. Proc. Natl. Acad. Sci . 109(39):E2579-86. PMID 22949671.
9. Mali, P., et al. 2013. RNA-Guided Human Genome Engineering via Cas9. Science . 339 (6121): 823-6. PMID
23287722.
10. Ran, FA., et al. 2013. Genome engineering using the CRISPR-Cas9 system. Nat. Protoc . (11): 2281-308. doi:
10.1038/nprot.2013.143. PMID 24157548.
11. Shalem O., et al. 2014. Genome-scale CRISPR-Cas9 Knockout Screening in Human Cells. ○○○○○ 343(6166):847. PMID 24336571.
ゲノム
編集総説
CRISPRCas システム
概論
Applied
Biological
Materials 社
技術情報
DNA 2.0 社
技術情報
OriGene
Technologies 社
技術情報
Santa Cruz
Biotechnology 社
技術情報
GeneCopoeia 社
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COSMO BIO CO., LTD.
27
■ 技術情報
Santa Cruz Biotechnology 社
Santa Cruz Biotechnology 社
CRISPR/Cas9 ゲノム編集用ツール
CRISPR/Cas9 ゲノム編集用ツール FAQ
ゲノム
編集総説
CRISPRCas システム
概論
Q
【01】RNA 干渉 (RNAi) と比べて CRISPR/Cas9 システムの利点はなんですか。
A
RNA 干渉では mRNA を標的し崩壊させるのに対し、CRISPR/Cas9 システムはゲノム DNA を標的し編集することで対象タンパ
ク質をノックアウトします。ゲノム DNA が編集されると、この変化は永久に持続します。
Q
【02】ジンクフィンガーヌクレアーゼ(ZFN)や TALEN より
CRISPR/Cas9 ゲノム編集ツールが好まれるのはなぜですか。
A
CRISPR/Cas9 システムはこれらより安価かつ切断効率と特異性がより優れています。
Q
【03】ガイド RNA(gRNA) 配列のデザイン方法を教えてください。
A
Santa Cruz Biotechnology 社では、GeCKO v2 ライブラリーより公表されている 3 種の gRNA 標的配列プールを利用します。
公表されているこれらの配列は編集効率が高く、オフターゲット作用が低いことが示されています。
Q
【04】gRNA 配列は提供されますか。
A
はい、gRNA 配列はご購入後、開示可能です。コスモ・バイオ営業部(欄外参照)までお問合せください。
Q
【05】なぜ CRISPR/Cas9 ノックアウトプラスミドは 3 種の標的 RNA 配列をプールして提供されるのですか。
A
Santa Cruz Biotechnology 社では十分な遺伝子破壊を確実に行うため、3 種の gRNA 配列をプールして CRISPR/Cas9 ノック
アウトプラス ミドとしてご提供しています。
Q
【06】CRISPR/Cas9 ノックアウトプラスミドを 3 種の gRNA プールではなく単独で提供してもらえますか。
A
はい。 CRISPR/Cas9 ノックアウトプラスミドセットをご購入頂き、 その後、 カスタムオーダーとして単一 gRNA の CRISPR/
Cas9 ノックアウトプラスミドをご購入いただくことが可能です。 コスモ・バイオ営業部(欄外参照)までお問合せください。
Q
【07】HDR プラスミドは 3 種のプールとして提供されますか。
A
はい。各 HDR プラスミドはそれぞれ相当する gRNA に対して機能するようデザインしてあります。
Q
【08】CRISPR/Cas9 ノックアウトプラスミドのみを遺伝子機能のノックアウトに単独で使用できますか。
A
はい。ただし、非相同末端結合(NHEJ)が起こり、挿入欠失が生ずる可能性があります。挿入欠失により読み取 り枠 (ORF) が変わり、
2 本鎖切断 (DSB) 以降のアミノ酸配列が大きく変わったり、中途での停止コドンが生じたり する可能性があります。NHEJ により
生じた挿入欠損はランダム変異となる可能性もあり、遺伝子破壊の種類や範 囲を実験的に決定する必要があります。
Q
【09】自分の細胞に CRISPR/Cas9 ノックアウトプラスミドが
トランスフェクションできたかどうか調べる方法を教えて ください。
A
GFP 発現を確認してトランスフェクション効率を決定することができます。また、遺伝子ノックダウンの程度を確 認するため、さらな
るアッセイも必要となります。
Q
【10】自分の細胞に HDR プラスミドがトランスフェクションできたかどうか調べる方法を教えてください。
A
RFP 発現を確認してトランスフェクション効率を決定することができます。また、遺伝子ノックダウンの程度を確認するため、さらな
るアッセイも必要となります。
Q
【11】CRISPR/Cas9 ノックアウトプラスミドと HDR プラスミドを用いてゲノム編集が
問題なく生じたことを調べる方 法を教えてください。
A
編集が行われた細胞にはそのゲノム DNA にピューロマイシン耐性遺伝子が組み込まれているため、ピューロマイ シン選択を行うこと
ができます。
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Santa Cruz Biotechnology 社
A
ゲノム DNA との適切なアライメントと相同組換え修復を確実なものとするため、800 塩基あります。
Q
【13】CRISPR コントロールはありますか。
A
Santa Cruz Biotechnology 社では CRISPR/Cas9 ノックアウトプラスミドに 1 つのスクランブル gRNA 配列を組み込んだネ
ガティブコン トロール(品番:SC-418922)をご用意しています。スクランブル gRNA 配列はゲノム標的 DNA に結合せず、また、
Cas9/gRNA 複合体は結合せず、DSB を生じません。
Q
【14】PAM 配列とは何ですか。
A
プロトスペーサー隣接モチーフ(PAM)配列は DNA 標的配列の 3' 末端に存在している必要があり、gRNA 配列には 存在しません。
Cas9 が DNA にうまく結合するためには、ゲノム DNA 内の標的配列は gRNA 配列に対して完全に相 補であり、3' 末端に連続し
て PAM 配列をもつ必要があります。
Q
【15】Cas9/gRNA 複合体はゲノム DNA のどの位置を切断するのですか。
A
Cas9 はゲノム DNA 内の標的配列 3' 末端の下流約 3 ~ 5 塩基対を切断します。
Q
【16】CRISPR/Cas9 システムは分裂細胞と非分裂細胞の双方に使えますか。
A
はい、両方に使えます。分裂細胞では NHEJ または HDR 経路が利用され、非分裂細胞では NHEJ 経路のみが利用さ れると考えら
れます。
Santa Cruz Biotechnology 社
【12】HDR プラスミドの相同性左腕(LHA)と相同性右腕(RHA)の長さはどれくらいですか。
CRISPR/Cas9 ゲノム編集用ツール
Q
【17】
異なる細胞株によって効果にばらつきがみられますか?
A
はい。効果は細胞株や標的配列によって変動します。
Q
【18】CRISPR/Cas9 システムでは、標的遺伝子のノックダウンをどのように確認しますか。
A
遺伝子ノックダウンを確認する方法はいくつかあります。ピューロマイシンにより HDR プラスミドにより編集さ れた細胞を選択する
ことができます。ウェスタンブロット分析によりタンパク質ノックダウンの確認が可能です。 また、ゲノム PCR によりゲノム組込み
を確認できるでしょう。ゲノム配列を増幅後、PCR 断片をクローニングして配列決定することで変異の検出もできるかもしれません。
Q
【19】トランスフェクションの検証を行う場合、ウェスタンブロットや免疫蛍光法はどのように利用できますか。
A
ウェスタンブロットや免疫蛍光法では Cas9 タンパク質の発現が確認できます。RFP マーカーを利用して顕微鏡下 で蛍光の可視化
もできますし、Cas9 抗体を利用することもできます。
Q
【20】一度にいくつの遺伝子をノックアウトできますか。
A
一度にノックアウトできる最大遺伝子数はまだよくわかっていません。種々の研究より一度に複数の遺伝子をノックアウトできること
が示唆されていますが、これは細胞への同時導入がどれだけできるかによります。Santa Cruz Biotechnology 社の CRISPR/Cas9
ノックアウトプラスミドに関しては 1 標的遺伝子ずつご利用いただくことを推奨し、保証しています。
ゲノム
編集総説
CRISPRCas システム
概論
Applied
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DNA 2.0 社
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Q
【21】CRISPR/Cas9 ノックアウトプラスミドを利用する場合、
Santa Cruz Biotechnology 社のどのトランスフェクション試薬や関連商品を購 入する必要がありますか。
A
品名
メーカー略号
品番
包装
希望販売価格
Control CRISPR/Cas9 Plasmid
SCB
UltraCruz Transfection Reagent
SCB
SC-418922
20 UG
ご照会
SC-395739
0.2 ML
Plasmid Transfection Medium
ご照会
SCB
SC-108062
20 ML
ご照会
Puromycin dihydrochloride
SCB
SC-108071
25 MG
ご照会
Santa Cruz Biotechnology 社では、各標的特異的 CRISPR/Cas9 ノックアウトプラスミド用のコントロール抗体もご提供してい
ます。詳細はコスモ・バイオ営業部(欄外参照)までお問い合せください。
お問い合わせ先:TEL:03-5632-9610 FAX:03-5632-9619 E-mail: [email protected]
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Genome-CRISP™ Custom CRISPR-Cas9 受託サービス
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CRISPR/Cas9 ゲノム編集用ツール
GCP
部位特異的にゲノム編集できる次世代遺伝⼦改変ツール!
CRISPR (Clustered Regularly Interspaced Short Palindromic Repeats) は真性細菌および古細菌が持つファージやプラスミドに対
する獲得免疫システムで機能する DNA 配列であり、Cas タンパク質ファミリーと組み合わせて⼀般に CRISPR/Cas システムと称されま
す。近年このシステムを⽤いたゲノム編集がゼブラフィッシュ、マウス、ラット、植物、細菌等で⾏われ、TALEN や ZFN に代わる可能性を秘
めた技術として注⽬されています。
CRISPR/Cas システムは 3 種類存在していますが、ゲノム編集には Cas9 タンパク質を利⽤した Ⅱ型が⽤いられ、crRNA と tracrRNA
が相互作⽤することで Cas9 エンドヌクレアーゼを標的 DNA 配列に誘導し、二本鎖切断を引き起こします。このシステムは crRNA と
tracrRNA 配列を融合して single-guided RNA (sgRNA) を合成することで単純化することができます。
sgRNA は相補的な 20 bp の標的 DNA 配列に結合し Cas9 を標的配列に呼び込みます。Cas9 は 標的配列に隣接する PAM (5'-NGG3') 配列を認識し、その上流を切断します。CRISPR-Cas9 システムはシンプルでありながら⾮常に強⼒なゲノム編集ツールであり、同時に複
数の標的配列を切断することも可能です。
sgRNA
(tractRNA-crRNA
chimera)
ゲノム特異的
sgRNA 配列
ゲノム
DNA
Cas9 ヌクレアーゼ
PAM(5'-NGG-3')
部位特異的二重鎖 DNA 切断
ゲノム
編集総説
CRISPRCas システム
概論
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記事ID:12069
図 1 CRISPR/Cas9 システム概要
Property
TALEN
CRISPR-Cas9
Type of
recognition
Protein-DNA
RNA-DNA
Methylation
sensitive
Sensitive
Not sensitive
Chromotin
structure
sensitive
Sensitive
Sensitive
Off-target effect
Less observed offtarget effects
More potential offtarget effects than TALENs and
ZFNs
Multiplexing
Rarely used
Capable
ゲノム
DNA
表 1 TALEN と CRISPR-Cas9 システムの⽐較
Genome-CRISP™ Cas9 ヌクレアーゼ発現クローン
Cas9 ヌクレアーゼ発現クローンはあらかじめ Cas9 遺伝⼦配列を含んでおります。Cas9 ヌクレアーゼは crRNA と tracrRNA ( ある
いはキメラ sgRNA) により宿主ゲノムのターゲット領域に誘導され、部位特異的な二本鎖切断 (DSBs) を引き起こします。切断部位は DNA
修復メカニズムの⼀つである⾮相同末端結合 (NHEJ) により繋ぎ合わされることで、⽋失や挿⼊が切断部位に⽣じます。また、二本鎖切断部位
に外来性の⼆重鎖ドナー DNA を相同的組換え (HR) により導⼊することも可能です。CRISPR/Cas9 システムはヒト ES 細胞や iPS 細胞
の改変や、ラット、ゼブラフィッシュ等のノックアウト動物の昨出にも利⽤されております。
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図 2 Cas9 ヌクレアーゼ発現クローンのマップ
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図 3 CRISPR-Cas9 によるゲノム編集
(左)sgRNA により誘導された Cas9 ヌクレアーゼが DSB を引き起こし、NHEJ により
修復される。
(右)sgRNA により誘導された Cas9 ヌクレアーゼが DSB を引き起こし、ドナープラス
ミドの発現させたい遺伝⼦ (GOI) と選択マーカーにより相同的組換えで修復される。
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野⽣型の Cas9 は 2 つの触媒ドメインを有しており、1 つは結
合鎖を切断し、もう 1 つは相補鎖を切断します。野⽣型 Cas9 の
D10A 変異体である Cas9 ニッカーゼは相補鎖切断活性が不活化
されているため、標的結合部位に 一本鎖切断を引き起こします。
sgRNA1
ゲノム
DNA
部位特異的一本鎖 DNA
切断
ゲノム
DNA
図 4 Cas9 ニッカーゼ発現クローンのマップ
図 5 Illustration of Cas9 nickase による一本鎖 DNA 切断の模式図
Genome-CRISP™ sgRNA デザイン・クローニングサービス
GeneCopoeia 社は single-guide RNA (sgRNA) の標的配列に対するデザインとクローニングサービスをご提供致します。sgRNA ク
ローンは crRNA と tracrRNA 配列からなる 一本鎖 sgRNA を発現します。sgRNA は標的 DNA 配列を認識し、同じくトランスフェクショ
ンした Cas9 を標的配列に呼び込んでノックアウト、ノックイン、突然変異誘発等のゲノム編集を⾏うための⼆重鎖切断を⾏います。複数の
sgRNA クローンを構築して Cas9 クローンと共にトランスフェクションすることにより、ゲノム中の複数部位を同時にゲノム編集すること
も可能です。
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Cas9 ニッカーゼ
Genome-CRISP™ Custom CRISPR-Cas9 受託サービス
Cas9 Nickase 発現クローン
■ Vector Type
Cas9 Nuclease
Selection Marker/
Reporter Gene
Vector
Promoter
sgRNA
pCRISPR-SG01
U6
1 or multiple
別売
Hygromycin
pCRISPR-CG01
U6
1 or multiple
CMV-driven Cas9 in the same vector
Neomycin / mCherry g
pCRISPR-CG02
U6
1
CBh-driven Cas9 in the same vector
N/A
ゲノム
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CRISPRCas システム
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図 6 HEK293T 細胞における HUWE I-sgRNA/Cas9 による HUWE I 遺伝子の切断
(A) HUWE I-sgRNA and genomic DNA PCR primer design.
(B) 6 ウ ェ ル プ レ ー ト 中 の HEK293T 細 胞 に HUWE I-sgRNA/Cas9 clone (Lane 1)
と scrambled-sgRNA/Cas9 controlclone (Lane 2) をトランスフェクションした。
細胞はトランスフェクションの 40 時間後に収集し、ゲノム DNA を抽出して HUWEspecific PCR primer を ⽤ い て PCR 増 幅 を ⾏ っ た。PCR 産 物 は ゲ ル 精 製 を ⾏ っ
た 後、8 uL を バ ッ フ ァー に 懸 濁 し て 変 性 と リ ア ニ ー ル を ⾏ い T7 endonuclease I
(37℃、60 min) で切断した。HUWE PCR 産物のサイズは 520bp、T7 ENI による
切断産物のサイズは 330 bp 及び 190 bp。
図 7 CRISPR-Cas9 による複数遺伝子の切断
HEK293T GFP 安 定 発 現 細 胞 に Cas9 と p53、HUWE1、NCL3、GFP を 標 的 と し た
multiple sgRNAs (Lanes 1-4) ⼜ は Cas9 と scrambled sgRNA (Lanes 5-8) を ト
ランスフェクションした。ゲノム DNA 中の挿⼊・⽋失の共存は T7 ENI アッセイにより検
証を⾏った。
「*」は Cas9 と multiple sgRNAs が効率的に各ターゲット配列に挿⼊・⽋
失を導⼊できたことを⽰している (Lanes 1-4)。
PCR 産物のサイズと T7ENI 切断産物のサイズは下記参照。
GFP : 720bp (intact), 340bp + 380bp (cleaved)
NCL3 : 765bp (intact), 295bp +470bp (cleaved)
HUWE : 520bp (intact), 190bp + 330bp (cleaved)
P53 : 825bp (intact), 475bp + 350bp (cleaved)
お問い合わせ先:TEL:03-5632-9610 FAX:03-5632-9619 E-mail: [email protected]
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GeneCopoeia 社
Genome-CRISP™ Custom CRISPR-Cas9 受託サービス
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参考価格と標準納期
分類
サービス名称
Cas9 nuclease expression clone
納品物: 10 ug plasmid DNA
参考価格
標準納期
¥139,000
3-4 週間
¥78,000
3-4 週間
¥139,000
3-4 週間
¥78,000
3-4 週間
納品物: 10 ug plasmid DNA sgRNA
Cas9 nuclease expression clone (&
only expression clone design and
sgRNA design and cloning service)
cloning service を同時にご注⽂頂いた場
合の価格です。
Cas9 D10A nickase expression clone
CRISPR-Cas9
納品物: 10 ug plasmid DNA
納品物: 10 ug plasmid DNA sgRNA
Cas9 D10A nickase expression clone
only expression clone design and
(& sgRNA design and cloning service)
cloning service を同時にご注⽂頂いた場
合の価格です。
sgRNA only expression clone design
and cloning service
sgRNA sequence の検証と 10 ug の
plasmid DNA が含まれます。
¥88,000
4-5 週間
All-in-one sgRNA + Cas9 expression
clone (single plasmid containing Cas9
and one sgRNA), design and cloning
sgRNA sequence の検証と 10 ug の
plasmid DNA が含まれます。
¥108,000
4-5 週間
¥220,000
6-9 週間
¥220,000
6-9 週間
¥221,000
5-7 週間
ご照会
ご照会
Plasmid-level validation
Surrogate reporter assay による
CRISPR-Cas9 の機能検証を⾏います。
弊社サイトに TALEN を⽤いた Surrogate
reporter assay の詳細を記載しております
のでご参照ください。
» 記事 ID:12069
機能検証
ゲノム
編集総説
Chromosomal-level validation
T7 Endonuclease assay による機能検証
( 図 6, 7 をご参照下さい ) を⾏います。検
証にはヒト HEK293 ⼜は H1299 細胞
を使⽤します。ご希望の細胞を使⽤すること
も可能ですので、コスモ・バイオ技術サービ
ス部テクニカルサービスグループまでお問い
合せください。
TEL :03-5632-9615
FAX :03-5632-9614
E-mail:[email protected]
CRISPRCas システム
概論
Applied
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サービス概要
ノックインドナー構築
Donor clone design and construction
遺伝⼦改変細胞作製
Stable cell line services
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ドナーベクターは下表の Donor Vector
Types からご選択下さい。
お好みの細胞を CRISPR-Cas9 でゲノム
編集し、モノクローナル化して納品致しま
す。セルバンク樹⽴も対応致します。
技術情報
■ Donor Vector Type
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選択番号
Vector
Promoter
Reporter Gene
Selection Marker
1
pDonor-01
EFa1
copGFP
Puromycin/TK
2
pDonor-02
CMV
copGFP
Neomycin/TK
3
pDonor-03
EFa1
N/A
Puromycin/TK
4
pDonor-04
CMV
N/A
Neomycin/TK
技術情報
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33
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(12168)
お願い および 注意事項
● 希望販売価格・・・
「希望販売価格」は参考であり、販売店様からの販売価格ではございません。
記載の希望販売価格は 2015 年 1 月 1 日現在の希望販売価格です。
予告なしに改定される場合がありますので、ご注文の際にご確認ください。消費税は含まれておりません。
● 使 用 範 囲・・・記載の商品は全て、「研究用試薬」です。
人や動物の医療用・臨床診断用・食品用等としては使用しないよう、十分ご注意ください。
取扱店
〒135-0016 東京都江東区東陽 2-2-20 東陽駅前ビル
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● 営業部(お問い合せ)
TEL :(03)5632-9610 FAX :(03)5632-9619
TEL :(03)5632-9620
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