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ProteoTuner™ System
細胞内の目的タンパク質 量 を迅速・可逆的にコントロール ProteoTuner™ System ▪目的タンパク質量の段階的な制御が可能 ▪シンプルな1ベクター、 1リガンドの構成 ▪数時間レベルの迅速な制御が可能 ProteoTuner™ システムの特長と各種製品の概要 ClontechのProteoTuner™システムは、標的とする目的タンパク質の安定化と不安定化をコントロールし、細胞内での目的タンパク質量 を制御する画期的なシステムです。標的タンパク質に直接作用して分解を制御するため、数十分から数時間レベルで極めて迅速に標的 タンパク質量を調節してタンパク質の機能解析を行うことができます。 システムの概要 CMVプロモーター Shield1の添加 DD 標的タンパク質 ON Shield1の添加による 標的タンパク質の 安定化と蓄積 (通常15∼30分) OFF Shield1の非添加 または除去による 標的タンパク質の分解 (通常60∼120分) Shield1 薬剤耐性 マーカー Destabilizing Domain (DD) Shield1の除去 ProteoTuner™ Systemは、不安定化ドメイン (DD)※1を標的タンパク質に融合発現させるためのpPTuner Vectorと、DDに結合して DD‐標的タンパク質をプロテアソームによる分解から保護する低分子化合物Shield1 ※2の2つのコンポーネントで構成されるシンプルな システムです。 細胞中に発現したDD‐標的タンパク質は、 プロテアソームにより迅速に分解されます。従って、Shield1が存在しない状態では、DD‐標的 タンパク質は常に分解を受け、発現がオフの状態になります (上図OFF) が、Shield1を培地に添加するとDD‐標的タンパク質は安定化し、 分解から保護されて発現がオンの状態となります (上図ON) 。 Shield1の添加、非添加により、細胞内での標的タンパク質の存在量を迅速かつ可逆的にコントロールすることができます。 ※1:Destabilizing Domain (12 kDa) 。融合発現した標的タンパク質のプロテアソームによるタンパク質分解を促進する。 ※2:膜透過性の低分子化合物 (750 Da) ProteoTuner™ Shield System (P2) ProteoTuner™ Guard System (P3) Tet-ProteoTuner™ 二段階発現調節ベクター (P4) ProteoTuner™ Quantificationシステム (P5) より高いS/N比を実現する レポーターアッセイシステム DD-蛍光タンパク質レポーターシステム (P6) ProteoTuner™免疫沈降キット ProteoTuner™ Immunoprecipitation Kit (P6) ProteoTuner™関連製品 ProteoTuner™ Tag Kit DD-モノクローナル抗体 ProteoTuner™ 基本システム 細胞内での標的タンパク質量をコントロール 細胞内での標的タンパク質量をコントロール タンパク質の発現レベルが低い時に効果的に機能する 膜貫通タンパク質の解析にも適している 目的タンパク質の発現を 転写制御と分解制御でコントロール DDタグ融合タンパク質量の定量 1 ProteoTuner™ System Tetシステムの厳密な転写制御とProteoTuner™システムの 分解制御を組み合わせた二段階制御が可能 DDタグ融合タンパク質量をシンプル&高感度に定量 (Web参照) ▶▶各製品の詳細はウェブカタログをご覧ください DDタグ融合タンパク質の細胞内での存在量をコントロール ProteoTuner™ Shield System ● リガンド添加量に依存した標的タンパク質量のコントロールが可能 ● 数時間レベルの迅速な分解が可能 Shield1濃度に依存した標的タンパク質量の制御例 Shield1除去による標的タンパク質の迅速な分解例 細 胞 内の標 的タンパク質 量は、細 胞 膜 透 過 性の低 分 子リガンド Shield1の培地中の濃度を調節することで制御できます。予備実験で Shield1濃度とタンパク質量の相関を調べておくことで、任意の発現量 に調整することができます。 培地にShield1を添加すると、Shield1が細胞内でDDタグに結合し、 標的タンパク質の分解が抑制されて細胞内での存在量が増加します。 一方、Shield1を培地交換により除去すると、DD融合タンパク質は 数時間レベルで非常に迅速に、積極的に分解されます。 500 600 500 ● DD-AcGFP1 400 300 200 蛍光強度 (RFU) 蛍光強度 (RFU) 700 400 350 ● DD-AcGFP1 300 250 200 150 100 100 0 450 50 0 100 200 300 400 500 600 700 800 0 900 1,000 0 50 Shield1濃度 (nM) 100 150 200 250 300 Shield1除去後の時間 (分) DD‐AcGFP1を安定発現するHEK 293細胞を異なる濃度のShield1存在下 で12時間培養した後、 フローサイトメトリーを用いて各Shield1濃度下での AcGFP1量 (蛍光強度) を測定した。Shield1濃度依存的にDD‐AcGFP1の存在量 が制御されていることが分かる。 DD‐AcGFP1を安定発現するHEK 293細胞をShield1 (1 μM) 存在下で12時間 培養後、培地交換を行ってShield1を除去し、AcGFP1の細胞内での存在量を フローサイトメトリーを用いて経 時 的に計 測した。S h i e l d 1 の 除 去により AcGFP1の存在量が迅速に減少していることがわかる。 (T1/2 ;∼100 min) Shield1量依存的な細胞表現型の制御例 A B 低分子量Gタンパク質の発現は細胞形態に特徴的な変化を起こす ことが良く知られている。低分子量Gタンパク質のひとつであるCdc42 の構成的活性型変異体Cdc42(Q61L)にDDを融合し、Shield1 依存的な細胞表現型への影響を観察した。 DD‐Cdc42(Q61L)発現細胞をShield1で処理した場合、予想通り の形態的変化が見られた。 この変化は可逆的であり、Shield1を除くと、 Shield1で処理していない細胞と区別できないほどの線維芽細胞様の 形態を示した。 C DD‐Cdc42 (Q61L) を安定発現するNIH3T3細胞を使用 パネルA:mock コントロール パネルB:1 μMのShield1で24時間処理 パネルC:1 μMのShield1で24時間処理後、洗浄し、Shield1非存在下で48時間培養 染色:Alexa Fluor® 488‐conjugated phalloidin 参考文献 1. Heo, W.D., and Meyer, T.(2003) 2. Banaszynski, L.A., .(2006) 113 (3) :315‒328. 126 (5) :995‒1004. ■ ProteoTuner™ Shieldシステムのラインアップ※1 製品名 製品コード ベクタータイプ 標的タンパク質に対するDD融合位置 蛍光タンパク質 ProteoTuner™ Shield System N 632172 Plasmid N末端側 ー ProteoTuner™ Shield System N(w/ AcGFP1) 632168 Plasmid N末端側 AcGFP1 ProteoTuner™ Shield System C※2 631072 Plasmid C末端側 ー Retro‐X™ ProteoTuner™ Shield System N 632171 Retroviral※3 N末端側 ー Retro‐X™ ProteoTuner™ Shield System N(w/ ZsGreen1) 632167 Retroviral※3 N末端側 ZsGreen1 ※1:各システムにはプラスミドベクターの他にShield1 (60 μl) が含まれています。 ※2:C末端に融合した場合 (System C) 、 リガンド非存在下での不安定化は、若干低下する傾向にあります。 ※3:レトロウイルスの産生には別途レトロウイルスパッケージングシステムやパッケージング用細胞株をご用意ください。 ProteoTuner™ System 2 〈ProteoTuner™ Shield Systemの使用文献、参考文献〉 使用文献 イオンチャンネルの成り立ちと機能をモニタリング Schoeber JPH, .(2009) 296: F204‒211. Znフィンガー型ヌクレアーゼによる遺伝子修復を制御 Pruett-Miller SM, .(2009) 5 (2) :e1000376. マウスにおける腫瘍形成の特徴 Banaszynski, LA, .(2008) 14 (10) :1123‒1127. 寄生性原虫における重要な遺伝子機能の解析例 Agop-Neresian C, (2009) 5 (1) :e1000270. Armstrong, CM, (2007) .4 (12) : 1007‒1009. Herm-Götz A, (2007) .4 (12) :1003‒1005. Erratum in: .(2008)5 (1) :113. 細胞骨格の再構築機構の解析例 On-Demand Protein Stabilization Using the Lenti-X ProteoTuner Systems(2008) XXIII (3) :2‒3. 関連文献 Banaszynski LA, A rapid, reversible, and tunable method to Maynard-Smith LA, . A directed approach for engineering regulate protein function in living cells using synthetic small conditional protein stability using biologically silent small molecules. molecules.(2006) . 126 (5) :995 -1004. (2007) . 282 (34) :24866-72. Epub2007 Jul 1. Berdeaux R, SIK1 is a class II HDAC kinase that promotes Banaszynski LA, survival of skeletal myocytes.(2007) . 13(5): (2006) 597-603. Epub2007 Apr 29. . Conditional control of protein function. 13(1) :11-21. Review. ProteoTuner™システムを用いた膜タンパク質のコントロールに ProteoTuner™ Guard System(レトロウイルスタイプ) (製品コード 631093/631095) ● 膜貫通型タンパク質の存在量のコントロールに ● ProteoTuner™ Shield Systemと併用することで2種類のタンパク質を独立に制御可能 ProteoTuner™ Guardシステムは、Shieldシステムとは異なる不安定化タグとリガンドを用いるProteoTuner™システムです。 ShieldシステムではFKBP12由来DDタグを、GuardシステムではecDHFR由来DDGタグを不安定化ドメインとして使用しています。それぞれ別々の タンパク質安定化技術であるため、互いに独立して作用させることが可能です。 システム ProteoTuner™ Shield System ProteoTuner™ Guard System※ 不安定化ドメイン リガンド 概要 DD Shield1 目的タンパク質をDDタグと融合して発現させ、培地にShield1リガンドを添加する ことで迅速に安定化させる。 Guard1 目的タンパク質をDDGタグと融合して発現させ、培地にGuard1リガンドを添加する ことで迅速に安定化させる。DDGタグを融合したCD8a( 膜貫通タンパク質) は、 Shield SystemのDDタグを標識した場合より、不安定化を効率よく誘導できたこと が 報 告されており、膜タンパク質 の制 御にはG u a r dシステムが 適している (Iwamoto, M. (2010) & 17 : 981-988.) 。 DDG ※Guardシステムは、 レトロウイルスベクタータイプのみです。製品にはpRetroX-PTuner2/C VectorとGuard1 (60 μl) が含まれます。 PuroteoTunerシステムでは、 プラスミドのトランスフェクションにより発現レベルが高くなる場合に、 タンパク質の不安定化が不完全になり、 バックグラウンドが高くなることがあります。 この場合、低発現 プロモーターベクターを使用することも可能ですが、 レトロウイルスを用いて、0.5∼5の低いMOIでコピー数を制御する方法が最も適しています。 二種類のタンパク質を迅速かつ独立にコントロール ProteoTuner™ Shield SystemおよびProteoTuner™ Guard System では、別々の異なった不安定化ドメインとリガンドを使用しています。 1つ目のタンパク質にShield不安定化ドメイン (DD) を融合し、別の タンパク質にGuard不安定化ドメイン (DDG) を融合することにより、 2種類のタンパク質量を同時にかつ個別にコントロールすることができ ます。 Shield1およびGuard1を同時に添加することにより、両方のタンパク質を安定化 することができる (左端図) 。Shield1またはGuard1のどちらか一方を添加すれば、 1 種 類のタンパク質のみを安 定 化させることができ ( 中 央 図 )、S h i e l d 1と Guard1のどちらも添加しなければ、両タンパク質を不安定化できる (右端図) 。 3 ProteoTuner™ System DD Tag DDG Tag Shield1 Protein A Both Ligands Shield1 Alone Guard1 Protein B Guard1 Alone Neither Ligand ▶▶各製品の詳細はウェブカタログをご覧ください Tetシステムの厳密な転写制御とProteoTuner™システムのタンパク質分解制御を 組み合わせた発現調節 Tet-ProteoTuner™ 二段階発現調節ベクター/pTRE-Cycle Vector ● 目的遺伝子の発現を、転写制御とタンパク質分解制御で二段階に調節 ● 2種類の遺伝子の発現調節が可能 ● 蛍光タンパク質レポーター共発現タイプも利用可能 pTRE‐Cycleベクターは、Tetシステムによる厳密な転写制御と、Tet応答性バイディレクショナルプロモーター、 さらにProteoTuner™システムによる 目的タンパク質の迅速な分解制御の3つの強力な技術が組み合わされた製品です。目的遺伝子の発現を、転写およびタンパク質分解の二段階で 調節できるため、非常に厳密で細かな制御が可能です。 また、 バイディレクショナルプロモーターにより、2つの遺伝子を同時に発現調節することもできます。 目的遺伝子の発現を二段階で調節 pTRE‐Cycle VectorはTet調節因子 (Tet‐On/Off Advanced transactivator) を発現する細胞中 で、Tet応答性バイディレクショナルプロモーター ( Tight‐BI ) から独立に2種類の遺伝子を転写 します。この際、転写調節は培地中のDox濃度 依存的に厳密に行われます (左図) 。 二段階目の発現調節は、培地中のShield1濃度 依存的に標的タンパク質の分解をコントロール するP r o t e o T u n e r 技 術を利 用しています。 pTRE‐Cycle Vector上のDDタグに融合させた 目的遺伝子 (Gene 2) は、 Tetシステムによる転写 制御に加え、 さらにタンパク質量の分解制御が 可能です。 Protein 1 Gene 1 Tight-BI DD + Shield1 Gene 2 Protein 2 + Dox (Tet-On) 転写 Gene 1 Tight-BI DD Gene 2 転写産物 Protein 1 転写 ‒ Shield1 pTRE‐Cycleベクターを用いて二種類の遺伝子を独立に制御した例 Sox2 Shield1conc. Dox conc. 0 0 1 Tight-BI 0 1 ng/ml 2 0 1 µg/ml 3 DD Oct4 0.5 µM 1 µg/ml 4 1.0 µM 1 µg/ml 5 Oct4 pTRE‐Cycleベクターに、 と 遺伝子をクローニングし、Tet‐On® Advanced transactivatorを発現するHEK 293細胞に導入した。 遺伝子には、不安定化タグ (DDタグ) 配列が付加されている。 Sox2タンパク質の発現は、Tetシステムにより制御されているため、Dox濃度依存的に、 タンパク量が検出されている。 一方Oct4タンパク質は、Tetシステムによる制御と不安定化タグによるタンパク質分解 の制御をうけるため、Shield1およびDoxの両方が培地中に存在する場合にのみ、 タンパク質が検出される。 Sox2 ■ 3種類のベクターから選択可能、 レポーターとして蛍光タンパク質を共発現するタイプも用意 製品コード TRE応答発現ベクター 概要 マルチクローニングサイトに2種類の遺伝子をクローニング でき、 そのうちの1つにはDDタグが融合 pTRE‐Cycle1 Vector 631115 MCS 製品名 pTRE‐Cycle2 Vector 631116 mCherry Tight-BI DD pTRE‐Cycle3 Vector 631117 ZsGreen1 Tight-BI DD MCS MCS MCS DD Tight-BI DDタグを融合した目的遺伝子の他に、 赤色蛍光タンパク質 をレポーター分子として発現 DDタグを融合した目的遺伝子の他に、 緑色蛍光タンパク質 をレポーター分子として発現 ProteoTuner™ System 4 DD融合タンパク質量をシンプル&高感度に検出 ProteoTuner™ Quantitationシステム ● 標的タンパク質 量 のコントロールと定量を1ベクターで実現 ● 酵素ベースのワンステップ定量アッセイ ● 標準的なルミノメーターで検出可能 (製品コード 632196) 製品内容 pPTuner Q Vector Shield1 ProLabel Detection Kit II ProteoTuner™ Quantitation Systemは、標的タンパク質 量 を迅速に可逆的に制御できる ProteoTuner™システム と、簡便かつ直接的にタンパク質量を定量できる ProLabelアッセイ を融合した画期的なタンパク質発現・定量システムです。 シンプルで高感度なタンパク質定量法(ProLabelアッセイ) ProLabelアッセイは、機能的に不活性な2つのフラグメントが会合することで 完全な活性型酵素を形成する、enzyme fragment complementation assay の原理に基づいたタンパク質定量法です。 標的タンパク質に融合したProLabelタグがEnzyme Acceptor(EA) と会合 すると活性型酵素が形成され、化学発光基質を開裂してシグナルが得られます。 この発光シグナルを検出することで、 タンパク質量を定量します。ProLabelアッセイ で検出される発光シグナル値は、 サンプル中のProLabelタグ融合タンパク質量 と直線的に相関します。 また、 検出は標準的なルミノメーターで検出可能であるため、 手間のかかるウェスタン ブロット解析を行う必要がありません。 化学発光基質 検出 Enzyme Acceptor (EA) 活性型酵素 化学発光 タンパク質量制御 &タンパク質定量システムを1つのベクターで構築 pUC ori CMV IE I (592) HSV TK polyA+ pPTuner Q Vector DD HI (982) 4484 bp I (1116) MCS ProLabel Tag SV40 polyA+ f1 ori Kanr/Neor pProteoTuner Q Vectorは、ProteoTuner™システムのDDタグと、ProLabel アッセイのProLabelタグを搭載しています。MCSに標的タンパク質をコードする 遺伝子をクローニングすると、N末端側にDDタグ、C末端側にProLabelタグを融合 して標的タンパク質を発現させることができます。 停止コドンを除いた標的遺伝子をMCSにクローニングし、発現ベクターを細胞に導入 するだけで、 ProteoTuner™ Quantitation Systemを用いたタンパク質定量が可能 になります。 SV40 ori 本システムによるAcGFP1タンパク質の定量例 25×10 4 ProLabel Activity RLU 20×104 15×104 10×104 5×104 0 Neg 0 50 100 250 500 1,000 Pos Shield concentration (nM) Fluorescence (RFU) B A 700 600 500 400 300 200 100 0 DD-AcGFP1-PL 0 200 400 600 800 1,000 Shield concentration (nM) 緑色蛍光タンパク質AcGFP1をpProteoTuner Q Vectorにクローニングし、 培養細胞に導入後、 異なる濃度のShield1 (0∼1,000 nM) で処理した。安定化したDD‐AcGFP1‐PL タンパク質量は、 ProLabelアッセイ (図A) とフローサイトメ トリー (図B) 、 さらに抗AcGFP1抗体を用いたウェスタンブロット解析 (data not shown) により定量した。 これら3つの方法を比較した結果から、 ProLabelアッセイは簡便かつ確実に標的タンパク質を定量できることが分かる。 Neg=negative control; nontransfected cells. Pos=ProLabel positive control. 5 ProteoTuner™ System ▶▶各製品の詳細はウェブカタログをご覧ください ProteoTuner™システムを利用した高S/N比レポーターアッセイ DD-蛍光タンパク質レポーターシステム (製品コード 632190/632191/632192) ● 非常に高いS/N比を実現 ● 蛍光タンパク質レポーターとして、tdTomato, AmCyan1, ZsGreen1をラインナップ CRE ZsGreen1 or DD-ZsGreen1 tdTomato or DD-tdTomato Flow cytometry 14 12 10 誘導倍率 レポーターアッセイに用いる蛍光タンパク質にDDタグを融合発現 することで、非常に高いS/N比を実現することができます。 従来法でS/N比を下げる原因となっていた非誘導時のレポーター のリークは、DDタグを融合することで起こる積極的な分解により、 本システムではほとんど見られなくなります。 誘導時にShield1を同時に添加することではじめてレポーターの 安定化が起きるため、バックグラウンドを抑え、非常に高いS/N比を 実現できます。 右図の実験例では、DDタグを融合した蛍光タンパク質はDDタグを 持たないものと比較して、tdTomatoの場合には約3倍、ZsGreen1 の場合には約6倍の高い誘導倍率を示すことが確認できました。 + Forskolin +Shield1 (4.5 hr) 8 6 4 2 0 CREtdTomato 製品内容 pDD-FP Reporter Vector (tdTomato or AmCyan1 or ZsGreen1) Shield1 (60 μl) CRE-DDtdTomato CRECRE-DDZsGreen1 ZsGreen1 HEK 293細胞に、 グラフ中の各レポーター遺伝子をそれぞれコードするpDD-Reporter Vectorを一過性にトランスフェクトした。24時間後、各細胞を10 μMのフォルス コリンと1 μMのShield1で同時に処理し、4.5時間後、 フローサイトメトリーを用いて 蛍光強度を測定し、 それぞれの誘導倍率を求めた。 DDモノクローナル抗体を用いた免疫沈降キット ProteoTuner™ Immunoprecipitation Kit (製品コード 635070) ● DDタグ融合タンパク質の免疫沈降キット ● 抗DD抗体、抗 I gG磁気ビーズ、およびバッファー類のセット ● 磁気ビーズを用いて迅速・簡便な免疫沈降を実現 本キットはProteoTuner™システムを応用した免疫沈降キットです。 キットには、DD融合タンパク質の免疫沈降や、 それと相互作用 するタンパク質の共精製を行うために必要な、抗DDモノクローナル 抗体、抗I gG磁気ビーズ、バッファー類が含まれています。 (本キットにはProteoTuner™ベクターは含まれません。) DD‐AcGFP1タンパク質の免疫沈降例 Shield1 concentration (nM) Utr 0 25 50 100 200 500 Neg 50̶ 製品内容 Mag Capture Beads DD Monoclonal Antibody (Clone 24A) (50 μg/ml) 10 × Cell Lysis Buffer IP Wash Buffer ProteoGuard EDTA-Free Protease Inhibitor Cocktail 37̶ 25̶ DD-tagged AcGFP1 20̶ DD‐AcGFP1を安定的に発現しているHEK 293細胞に、Shield1を濃度を増加 させて添加し、合成されたDD‐AcGFP1を安定化した。その後、DD Monoclonal Antibodyを用いて免疫沈降し、抗AcGFP1ポリクローナル抗体を用いてウェスタン ブロット解析を行った (5 × 105 cells/lane) 。高濃度のShield1を添加した場合、 より多くのDD‐AcGFP1が安定化し、免疫沈降によって回収された。 Utr ;トランスフェクションされていないHEK 293細胞 Neg;DD Monoclonal Antibodyを用いずに免疫沈降を行ったサンプル (DD‐AcGFP1が非特異的にMag Capture Beadsに結合しないことの確認) ProteoTuner™ System 6 ■ 製品リスト 製品名 概要 容量 製品コード 価格(税別) 備考 ProteoTuner™ Shield System N DDタグを標的タンパク質のN末端側 に融合発現 1 Kit 632172 ¥116,000 ProteoTuner™ Shield System C DDタグを標的タンパク質のC末端側 に融合発現 1 Kit 631072 ¥116,000 ProteoTuner™ Shield System N(w/ AcGFP1) IRESを介してAcGFP1を同時発現 1 Kit 632168 ¥116,000 6ウェルプレート 約30ウェル分 60 μl 631037 ¥17,000 6ウェルプレート 約100ウェル分 200 μl 631038 ¥39,000 6ウェルプレート 約250ウェル分 500 μl 632189 ¥53,000 1 Kit 632171 ¥123,000 1 Kit 632167 ¥123,000 1 Kit 631093 ¥125,000 1 Kit 631095 ¥125,000 60 μ l 635051 ¥17,000 500 μl 635052 ¥53,000 20 μg 631115 ¥98,000 20 μg 631116 ¥112,000 20 μg 631117 ¥112,000 1 Set 632196 ¥138,000 1 Set 632190 ¥112,000 ラ 営 1 Set 632191 ¥112,000 ラ 営 1 Set 632192 ¥112,000 ラ 営 抗DD抗体、 抗IgG磁気ビーズ、 バッファー などのセット 25回 635070 ¥64,000 ProteoTuner™ Tag Kit DDタグ供給用ベクター 25回 631091 ¥99,000 DD Monoclonal Antibody DDモノクローナル抗体 50 μl 631073 ¥30,000 ProteoTuner™ Shieldシステム Shield1 ラ 営 ProteoTuner™ Shieldシステム (レトロウイルスタイプ) Retro-X™ ProteoTuner™ Shield System N DDタグをN末端側に融合発現 (レトロウイルスタイプ) Retro-X™ ProteoTuner™ Shield System N(w/ ZsGreen1) IRESを介してZsGreen1を同時発現 ラ 営 ProteoTuner™ Guard システム (レトロウイルスタイプ) Retro-X™ ProteoTuner™ Guard System N Retro-X™ ProteoTuner™ Guard System C Guard1 DDGタグをNまたはC末端側に融合 発現 (レトロウイルスタイプ) Guard1リガンド Tet‐ProteoTuner™ 二段階発現調節ベクター pTRE-Cycle1 Vector 目的遺伝子の発現を、転写制御とタン パク質分解制御で二段階に調節 pTRE-Cycle2 Vector pTRE-Cycle3 Vector * ラ 営* ラ 営* ProteoTuner™ Quantitation システム DD融合タンパク質量を迅速・簡便に 定量 ProteoTuner™ Quantitation System DD‐蛍光タンパク質レポーターシステム DD-tdTomato Reporter System 高いS / N 比のレポーターアッセイを 実現 DD-AmCyan1 Reporter System DD-ZsGreen1 Reporter System ProteoTuner™免疫沈降キット ProteoTuner™ Immunoprecipitation Kit ProteoTuner™関連製品 ラ ご購入に際してライセンス確認書が必要となります。 営 営利施設の場合、 ご購入前にライセンス (有償) を取得する必要があります。 (上記リストでは、 いずれも蛍光タンパク質に関するライセンスです。) * 本製品は、Tetシステムに関するご購入前のライセンス取得やご購入時のライセンス確認書の提出が不要になりました。 ご購入前に、MTA (Material Transfer Agreement) の内容をご確認の上、 ご注文ください。 最新のライセンス情報に関しては弊社ウェブサイトにてご確認ください。 本パンフレットに記載されている商品名等は、特に記載はなくても各社の商標、 または登録商標です。 ・本パンフレットで紹介した製品はすべて研究用として販売しております。 ヒト、動物への医療、臨床診断用には使用しないようご注意ください。 また、食品、化粧品、家庭用品等として使用しないでください。 ・タカラバイオの承認を得ずに製品の再販・譲渡、再販・譲渡のための改変、商用製品の製造に使用することは禁止されています。 ・本パンフレット記載の価格は2011年12月1日現在の希望小売価格です。価格に消費税は含まれておりません。 販売元 製造元 取扱店 東日本販売課 西日本販売課 TEL 03-3271-8553 FAX 03-3271-7282 TEL 077-565-6969 FAX 077-565-6995 テクニカルサポートライン 製品の技術的なご質問に専門の係がお応えします。 TEL 077-565-6999 FAX 077-565-6995 クロンテックウェブサイト タカラバイオウェブサイト http://clontech.takara-bio.co.jp http://www.takara-bio.co.jp 2011年12月作成20K